Parlons des masques, les connaissances ont beaucoup évolué, les légendes moins rapidement. On nous a expliqué qu’ils ne servaient à rien quand Salomon avait détruit les stocks, puis qu’ils étaient obligatoires même en plein vent sur la plage . .
Les recherches scientifiques nous apprennent qu’ils sont pire que le mal…l’Ordre des Médecins va juger le Docteur Loridan parce qu’il a entièrement raison sur les masques (65 publications scientifiques confirment son analyse)
L’exposition humaine aux additifs MF par inhalation est estimée à 4,5 à 6 440 µg/personne par an pour les cinq additifs ci-dessus, et par ingestion à 0,1 à 204 µg/personne. Notamment, la libération d’additifs par les masques faciaux n’est pas négligeable car l’exposition humaine annuelle aux phtalates, aux esters organophosphorés, aux substances per- et polyfluoroalkyles des masques par inhalation est d’environ 491 à 1820 µg/personne.
Les #masques sont toxiques : Les additifs comprennent des plastifiants (DEHP, DBP), des retardateurs de flamme (TCEP, TPhP, TEHP), des antioxydants (bisphénols, AO168, AO1010, DBP) et des surfactants (PFAS, NPE), à des concentrations de 100-106 ng/g.
Un aperçu des additifs chimiques sur les fibres (micro)plastiques : apparition, libération et risques pour la santé
Nous avons constaté que les masques en coton, les masques chirurgicaux, et les masques N95 ont tous un effet protecteur vis-à-vis de la transmission des gouttelettes/aérosols infectieux du SRAS-CoV-2 et que l’efficacité protectrice était plus élevée lorsque les masques étaient portés par un propagateur de virus. Il est important de noter que les masques médicaux (masques chirurgicaux et même masques N95) n’ont pas été en mesure de bloquer complètement la transmission des gouttelettes/aérosols de virus, même lorsqu’ils étaient complètement scellés. Nos données aideront les travailleurs médicaux à comprendre l’utilisation et les performances appropriées des masques et à déterminer s’ils ont besoin d’équipements supplémentaires pour se protéger des patients infectés.
Dans un monde civilisé quand 500 médecins attestent dans des certificats de décès que les vaccxx sont responsables , on cesserait d’injecter
Statistiques DeStatis 2021 sur les causes de décès : 218 décès avec des certificats de décès indiquant que la vaccination contre le COVID19 est la cause principale. 36 morts dont le certificat de décès mentionnait une « vaccination virale non précisée » comme cause principale. Sans effets secondaires ?
Selon le certificat de décès, 19 des décès vaccinaux avaient moins de 45 ans, 69 moins de 60 ans.
Sous T88.1, il y a 255 autres cas classés par les médecins comme « décès par vaccination ». Dont 3 de moins de 25 ans, 20 de moins de 45 ans et 71 de moins de 50 ans
Ils ne veulent pas lire les preuves scientifiques La nature cancerigene des injections covid se precise malheureusement, un scandale digne de celui du tabac, une folie collective .
En France Face à la pénurie de certains médicaments, le ministre de la Santé préconise… le masque, face à la surmortalité la censure frappe plus fort ( votre serviteur chassé de Linkedin et puni sur Facebook). Il est interdit de s’inquiéter , les Fact Chekers veillent, la vérité ne passera pas en Macronland .
Les chiffres allemands proviennent de l’assurance et portent sur 72 millions de personnes. Le VP du Bundestag demande une enquete Une étude a déja démontré qu’un tiers des décès après la vaccination étaient dus à la Vaccination
Un ado vacciné COVID sur trois a connu des manifestations cardiovasculaires après les injections , lésion possible du muscle cardiaque pour 3% , pour les autres on ignore les conséquences futures
comment faire accepter un produit nocif pour la santé ?
La réponse est très simple : faire approuver le produit par les docteurs. En effet, tout le monde a une confiance aveugle en son docteur pour les questions de santé. Hier des affiches , aujourd’hui des télétoubibs
Hier les publication scientifiques démontrant les dangers et aujourd’hui?
Encore et toujours des publications scientifiques censurées par les Fact checkers …
Il faut rappeler que les essais officiels n’ont pas abordé les risques de cancers. Depuis les publications se sont multipliées
Parmi les nombreux acteurs qui permettent à notre système immunitaire de lutter contre les maladies, les lymphocytes T peuvent être comparés à des soldats qui aident l’organisme à lutter contre les infections et d’autres maladies, y compris le cancer.
Toutefois, les cellules tumorales peuvent échapper à cette attaque en exprimant à leur surface une protéine appelée PD-L1. PD-L1 fonctionne comme un « panneau stop » et inactive les lymphocytes T avant qu’ils n’attaquent.
Le PD-L1 agit en se liant à des récepteurs appelés PD-1 et B7.1 situés sur les lymphocytes T. La liaison de PD-L1 avec l’un ou l’autre de ces récepteurs conduit à l’inactivation des lymphocytes T.
Cette liaison entre PD-L1 et ses récepteurs constitue donc une cible thérapeutique intéressante pour l’immuno-oncologie. En effet, le blocage de la protéine PD-L1 peut empêcher les cellules cancéreuses d’inactiver les lymphocytes T par le biais des récepteurs PD-1 et B7.1. Les lymphocytes T retrouvent donc leur rôle dans la détection et la destruction des cellules cancéreuses.
LA VACCINATION GENERE UNE FORTE HAUSSE DE LA PROTEINE DE MORT CELLULAIRE PROGRAMMEE
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36245120/ Augmentation des marqueurs de l’apoptose (SUICIDE cellulaire) sur des cellules immunitaires après vaccin Covid : une explication possible pour l’immunosuppression post-vaccinale?
Nos résultats démontrent une augmentation statistiquement significative (p<0,01) de l’expression de PD-L1 à la fois sur les granulocytes périphériques et les monocytes des individus vaccinés ( Figure 1 ; intensité de fluorescence médiane delta moyenne [MFI] 1,71 et 2,26, respectivement) par rapport au contrôle groupe d’individus sains non vaccinés
La signification de l’expression de PD-L1 après immunisation est actuellement inconnue. La régulation à la hausse de PD-L1 pourrait simplement refléter la régulation immunitaire physiologique, mais d’un autre côté, elle pourrait également influencer le résultat des vaccinations ou l’incidence et le type d’effets secondaires. En effet, un rapport de cas récemment publié suggère que la régulation à la hausse de PD-L1 après la vaccination peut être corrélée à certains effets secondaires de la vaccination
Un récepteur de point de contrôle inhibiteur important est la protéine de mort cellulaire programmée 1 (PD-1, CD279) qui se trouve généralement sur les cellules T et également sur d’autres cellules comme les cellules B matures . Ses ligands, programmé mort-ligand 1 (PD-L1) et PD-L2, sont régulièrement exprimés sur les cellules présentant l’antigène comme les cellules dendritiques et les macrophages ; une régulation à la hausse de PD-L1 est observée après activation des monocytes et des granulocytes
la régulation à la hausse de pdl1 entraînera donc une immunosuppression…
L’expression aberrante du ligand-1 de mort programmée (PD-L1) dans les cellules tumorales favorise la progression du cancer en supprimant l’immunité contre le cancer .
Une expression marquée de PD-L1 a été rapportée dans divers types de cancers humains et de cellules immunitaires infiltrant les tumeurs.
Immunologie et immunothérapie du cancer du sein : ciblage de la protéine de mort cellulaire programmée-1/protéine de mort cellulaire programmée ligand-1
Z Ma, W Li, S Yoshiya, Y Xu, M Hata… – Clinical Cancer …, 2016 – AACR
… It is of note that combination of IL18 and CTLA-4 or PD–L1 … Although dual blockade of PD–L1 and CTLA-4 pathways also … Although dual blockade of PD–L1 and CTLA-4 signaling elicited …
R Imamura, S Kitagawa, T Kubo, A Irie, T Kariu… – The …, 2021 – Wiley Online Library
… PD–L1 expression. To determine whether C5a affected the PC cell PD–L1 expression, we investigated the PD–L1 … PC-3 cells expressed the PD–L1 protein, and their production increased …
Y Inoue, K Yoshimura, K Mori, N Kurabe, T Kahyo… – Oncotarget, 2016 – europepmc.org
… PD-1) and its ligand (PD–L1), because PD–L1 expression on tumor cells has limited … PD–L1 and PD-L2 gene copy number gains using fluorescence in situ hybridization as well as PD–L1 …
GK Philips, M Atkins – International immunology, 2015 – academic.oup.com
… BMS-936559 is a fully human IgG4 antibody that inhibits binding of PD–L1 to PD-1 and CD80 (which binds not only PD–L1 but also CTLA-4 and CD28) with high affinity. In a Phase I trial …
AV Bazhin, K Von Ahn, J Fritz, J Werner… – Frontiers in …, 2018 – frontiersin.org
… and p38 activation with specific inhibitors prevented PD–L1 up-regulation. Our findings … of PD–L1 expression and prove that IFNα induces STAT3/p38-mediated expression of PD–L1 and …
K Cassady, PJ Martin, D Zeng – Frontiers in immunology, 2018 – frontiersin.org
… Our group has carried out experiments to elucidate how PD–L1/CD80 interaction impacts PD–L1/PD-1 interaction. First, we found that PD–L1/CD80 interaction augments the expansion …
A Arfe, G Fell, B Alexander, MM Awad… – JCO Precision …, 2020 – ascopubs.org
… imposed that ICIs’ benefits on OS could not decrease as the PD–L1 expression level increases (eg, that the ΔRMST in the 0%-1% PD–L1 class can only be equal to or lower than that in …
A Costantini, C Julie, C Dumenil… – Revue des Maladies …, 2018 – Elsevier
Rôle pronostique et prédictif du PD–L1 plasmatique dans les cancers bronchiques non à petites … L’objectif de ce travail est d’explorer l’intérêt du PD–L1 plasmatique (PD-L1p) comme …
C Nardin, M Cordonnier, G Chanteloup… – … de Dermatologie et de …, 2020 – Elsevier
… PD–L1 dans les exosomes de lignées cellulaires de mélanome (B16F10, SK-MEL-2). Les Exo-PD–L1 … Cependant, les variations de taux d’Exo-PD–L1 (ΔExo-PD–L1) étaient corrélées à …
Pourquoi les excès de mortalité constatés dans nos pays ne semblent intéresser personne? Pourtant,cet excès de morts des MOINS DE 50 ans au #Danemark a conduit à un arrêt des vaccinations de cette tranche d’âge Ma question est: pourquoi continue-t-on à pousser la vaccination ici?
merci de diffuser suis censuré Facebook Linkedin
APRES L’AUSTRALIE,L’ALLEMAGNE EST RAVAGEE PAR UNE EPIDEMIE DE MORTS SUBITES ET D’ARRETS CARDIAQUES depuis le début de la vaccination (X2,5) #JusticePourLesSuspendus
En France Face à la pénurie de certains médicaments, le ministre de la Santé préconise… le masque, face à la surmortalité la censure frappe plus fort ( votre serviteur chassé de Linkedin et puni sur Facebook). Il est interdit de s’inquiéter , les Fact Chekers veillent, la vérité ne passera pas en Macronland .
Les chiffres allemands proviennent de l’assurance et portent sur 72 millions de personnes. Le VP du Bundestag demande une enquete Une étude a déja démontré qu’un tiers des décès après la vaccination étaient dus à la Vaccination
Regardez le document ci dessous, les morts subites liées à des arrêts cardiaques sont passées de 5/6000 par trimestre à 15000 depuis le début des campagnes de vaccination
L’assurance-vie est utilisée par la plupart pour se prémunir contre les pertes financières en cas de décès soudain et inattendu d’un soutien de famille. L’Association nationale des médecins d’assurance maladie statutaire (KBV) assure 72 millions de personnes vivant – leurs données méritent une analyse en fonction du moment et du nombre de doses prises
l’AFD a organisé une conférence de presse pour dévoiler les données sur 72 millions de patients (les 90 % d’Allemands ayant une assurance maladie légale) qu’ils avaient obtenues auprès de KBV, l’association qui représente tous les médecins assurés en Allemagne. Ces données résument le nombre de fois où tous les codes de diagnostic de la CIM-10 (une norme internationale) ont été utilisés par les prestataires de soins de santé allemands pour ces patients ( en dehors des hôpitaux ) entre le premier trimestre de 2016 et le premier trimestre de 2022.
Ces données sont-elles valides ?
Suite à la conférence de presse de l’AFD, le principal institut de recherche médicale en Allemagne, ZI, s’est fait tiers pour présenter une réfutation de la manière dont l’AFD a interprété les données de KBV.
leur réponse reconnaissait l’authenticité de ces données
. • Les autorités allemandes ont une longue expérience des tentatives de dissimulation des preuves des dommages causés par les vaccins. bof
l’augmentation des décès constatée aux trimestres I-IV 2021 et au trimestre I 2022 est en grande partie une mortalité liée à la pandémie.
Bof c est en 2020 que la covid a le plus frappé et il n’y a pas d’augmentation. De plus les codes correspondent à des morts subites, ce qui n’est pas le cas des morts covid•
des décédés 2016 à 2020 facturés en 2021… Des preuves svp et en 2022? la hausse est aussi forte.
Les décès subits survenant de manière cohérente avant 2021 dans l’ensemble de données (cela invalide l’argument avancé par le ZI qu’il a « traité » en disant que ces décès antérieurs étaient dus à des erreurs de transmission de données).
Enfin, la feuille ci-dessus a été triée par ce lecteur dans une feuille de calcul intelligente qui vous permet d’observer facilement quels codes ont eu la plus forte augmentation en 2021-2022 (par exemple pour les trier ou créer des graphiques). Pour ceux d’entre vous qui sont enclins aux données, vous voudrez probablement créer cette feuille vous-mêmes
Dans une interview avec WELT, le pathologiste de Heidelberg Peter Schirmacher a appelé à plus d’engagement politique en ce qui concerne la recherche sur les effets secondaires des vaccins. Le vice-président du Bundestag, Wolfgang Kubicki (FDP), fait désormais campagne pour beaucoup plus d’autopsies. L’Union veut aussi plus d’engagement.
Melbourne installe des défibrillateurs à l'extérieur des maisons, s'assurant que chaque résident en a un accès facile suite à l'augmentation des arrêts cardiaques soudains… 🔴Le pseudo vaxxxxin Tue ! pic.twitter.com/5febTZRxkF
L’Australie ne propose plus d’assurance décès depuis le printemps 2021
« Une abondance d’études a montré que les vaccins à ARNm ne sont ni sûrs ni efficaces, mais carrément dangereux. » Voici la citation, avec où la trouver, Volume 7, Numéro 3, pg 493 …Journal of Clinical & Experimental Immunology.
L’ Amerique se réveille
Tourné avec Emerald Robinson « Absolute Truth » pour commenter l’enquête du grand jury DeSantis. La publicité illégale suggérée qui ne décrit pas fidèlement les risques (dommages cardiaques, caillots sanguins, lésions neurologiques) de ces produits figurera en tête de liste.
Un mois de censure sur Facebook et surtout la radiation de Linkedin pour un simple post ? merci de m’aider en vous abonnant au blog et en diffusant massivement cette lettre ouverte à la directrice France de Linkedin et si vous le pouvez en lui écrivant
En me censurant, en détruisant mon compte vous assumez donc avec certitude ,devant l’histoire ,les malades, leurs proches que les vaccins covid n’ont pas de conséquences sur les maladies à prions.
Lettre ouverte à Madame Fabienne Arata, directrice générale de LinkedIn France
Vous avez pris la décision de supprimer mon compte Linkedin ouvert en 2013. Cette décision serait liée à la publication d’un post de quelques lignes renvoyant à un article de mon blog intitulé ; « le dernier avertissement de Luc Montagnier ».
Cet article faisait le compte rendu des derniers articles du Prix Nobel mais également de quatre études très récentes publiées par des scientifiques de renommée mondiale posant clairement la question des risques entre Arm et prions .
Ces études se réfèrent elles-mêmes à plusieurs centaines d’autres publications.
Dans un passé récent la connaissance par un plus large public d’études scientifiques a contribué à mettre fin à de nombreux scandales sanitaires . Depuis trois ans la diffusion d’études scientifiques a contribué à une meilleure prise en charge de la covid en brisant de fausses informations largement répandues par la presse dite main stream.
Ainsi : l’importance de la prise en charge précoce des malades, le rôle des anti inflammatoires et des anticoagulants. Encore , l’abandon de l’intubation au profit de l’oxygène à haute pression , la reconnaissance du rôle de la vitamine D .
De même de nombreux pays ont pris conscience des effets secondaires des vaccinations ce qui a conduit à les remettre en cause pour les plus jeunes.
De nouvelles études trop peu connues mettent en évidence les risques mortels de confusion entre covid et paludisme . Soigner avec du doliprane quelqu’un qui fait une crise grave de paludisme ne le protègera pas , l’artémisinine l’aurait sauvé….
Ce qui est publié dans des revues scientifiques mais censuré par des « fact chekers » peut sauver des vies.
La responsabilité y compris pénale de ceux qui censurent sera engagée
En me censurant, en détruisant mon compte vous assumez donc avec certitude ,devant l’histoire et les malades, que les vaccins covid n’ont pas de conséquences sur les maladies à prions.
Le libre accès aux publications scientifiques est la seule arme disponible pour les lanceurs d’alerte face aux conflits d’intérêts .
Je vous demande donc de restaurer mon compte
Je vous prie de croire à l’expression de mes sentiments distingués
Patrice Gibertie
Universitaire retraité
Les dernières publications du Nobel Luc Montagnier , avec JC Perez
Worse Than the Disease? Reviewing Some Possible Unintended Consequences of the mRNA Vaccines Against COVID-19
Dans « Innate Immune Suppression by SARS-CoV-2 mRNA Vaccinations: The Role of G-quadruplexes, Exosomes and MicroRNAs », Stephanie Seneff, Ph.D., and Drs. Peter McCullough, Greg Nigh et Anthony Kyriakopoulos expliquent comment les injections de COVID-19 suppriment votre fonction immunitaire innée et comment elles peuvent provoquer des maladies neurologiques.
Nous passons ensuite en revue les deux composants et la réponse biologique prévue à ces vaccins, y compris la production de la protéine de pointe elle-même, et leur relation potentielle avec un large éventail de pathologies induites aiguës et à long terme, telles que les troubles sanguins, les maladies neurodégénératives et les maladies auto-immunes.
Une autre étude américaine a émis l’hypothèse qu’une protéine de pointe mal repliée pourrait à son tour créer une région de prion mal repliée qui pourrait être capable d’interagir avec des prions sains pour causer des dommages, conduisant à la MCJ.
4eme étude
Une étude évaluée par des pairs en Turquie ( pdf ) en octobre 2021 décrit un premier cas suspect
Creutzfeldt-Jakob Disease After the COVID-19 Vaccination
LES AUTRES ETUDES
Abe M., Bonini N.M. MicroRNAs and neurodegeneration: role and impact. Trends Cell Biol. 2013;23(1):30–36. doi: 10.1016/j.tcb.2012.08.013. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Agashe D., Martinez-Gomez N.C., Drummond D.A., Marx C.J. Good codons, bad transcript: large reductions in gene expression and fitness arising from synonymous mutations in a key enzyme. Mol. Biol. Evol. 2013;30:549–560. doi: 10.1093/molbev/mss273. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Al-Khalaf H.H., Aboussekhra A. p16 controls p53 protein expression through miR-dependent destabilization of MDM2. Mol. Cancer Res. 2018;16(8):1299–1308. doi: 10.1158/1541-7786.MCR-18-0017. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Alsamman K., El-Masry O.S. Interferon regulatory factor 1 inactivation in human cancer. Biosci. Rep. 2018;38(3) doi: 10.1042/BSR20171672. 2018. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Andries O., Mc Cafferty S., De Smedt S.C., Weiss R., Sanders N.N., Kitada T. N1-methylpseudouridine-incorporated mRNA outperforms pseudouridine-incorporated mRNA by providing enhanced protein expression and reduced immunogenicity in mammalian cell lines and mice. J. Contr. Release. 2015;217:337–344. doi: 10.1016/j.jconrel.2015.08.051. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Asmana Ningrum R. Human interferon α-2b: a therapeutic protein for cancer treatment. Sci. Tech. Rep. 2014 doi: 10.1155/2014/970315. 2014. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Atoui A., Jarrah K., Al Mahmasani L., Bou‐Fakhredin R., Taher A.T. Deep venous thrombosis and pulmonary embolism after COVID‐19 mRNA vaccination. Ann. Hematol. 2022:1–3. doi: 10.1007/s00277-021-04743-1. [Epub ahead of print] [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Avolio E., Gamez M., Gupta K., Foster R., Berger I., Caputo M., Davidson A., Hill B., Madeddu P. The SARS-CoV-2 spike protein disrupts the cooperative function of human cardiac pericytes – endothelial cells through CD147 receptor-mediated signalling: a potential non-infective mechanism of COVID-19 microvascular disease. bioRxiv preprint. 2020 doi: 10.1101/2020.12.21.423721. December 21. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Babendure J.R., Babendure J.L., Ding J.H., Tsien R.Y. Control of mammalian translation by mRNA structure near caps. RNA. 2006;12(5):851–861. doi: 10.1261/rna.2309906. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Babic T., Browning K.N. The role of vagal neurocircuits in the regulation of nausea and vomiting. Eur. J. Pharmacol. 2014;722:38–47. doi: 10.1016/j.ejphar.2013.08.047. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Bahl K., Senn J.J., Yuzhakov O., Bulychev A., Brito L.A., Hassett K.J., Laska M.E., Smith M., Almarsson Ö., Thompson J., et al. Preclinical and clinical demonstration of immunogenicity by mRNA vaccines against H10N8 and H7N9 influenza viruses. Mol. Ther. 2017;25(6):1316–1327. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.03.035. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Bansal S., Perincheri S., Fleming T., Poulson C., Tiffany B., Bremner R.M., Mohanakumar T. Cutting edge: circulating exosomes with COVID spike protein are induced by BNT162b2 (PfizerBioN-Tech) vaccination prior to development of antibodies: a novel mechanism for immune activation by mRNA vaccines. J. Immunol. 2021;207(10):2405–2410. doi: 10.4049/jimmunol.2100637. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Barone V., Camilli F., Crisci M., Scandellari C., Barboni P., Lugaresia A. Inflammatory optic neuropathy following SARS-CoV-2 mRNA vaccine: description of two cases. J. Neurol. Sci. 2021;429:118186. doi: 10.1016/j.jns.2021.118186. [CrossRef] [Google Scholar]
Bezzi G., Piga E.J., Binolfi A., Armas P. CNBP binds and unfolds in vitro G-quadruplexes formed in the SARS-CoV-2 positive and negative genome strands. Int. J. Mol. Sci. 2021;22(5):2614. doi: 10.3390/ijms22052614. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Bhurani V., Mohankrishnan A., Morrot A., Dalai S.K. Developing effective vaccines: cues from natural infection. Int. Rev. Immunol. 2018;37(5):249–265. doi: 10.1080/08830185.2018.1471479. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Bidwell B.N., Slaney C.Y., Withana N.P., Forster S., Cao Y., Loi S., Andrews D., Mikeska T., Mangan N.E., Samarajiwa S.A., et al. Silencing of Irf7 pathways in breast cancer cells promotes bone metastasis through immune escape. Nat. Med. 2012;18(8):1224–1231. doi: 10.1038/nm.2830. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Blanco-Melo D., Nilsson-Payant B.E., Liu W.C., Uhl S., Hoagland D., Møller R., Jordan T.X., Oishi K., Panis M., Sachs D., et al. Imbalanced host response to SARS-CoV-2 drives development of COVID-19. Cell. 2020;181(5):1036–1045 e9. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Brosh-Nissimov T., Orenbuch-Harroch E., Chowers M., Elbaz M., Nesher L., Stein M., Maor Y., Cohen R., Hussein K., Weinberger M., et al. BNT162b2 vaccine breakthrough: clinical characteristics of 152 fully vaccinated hospitalized COVID-19 patients in Israel. Clin. Microbiol. Infect. 2021;27(11):1652–1657. doi: 10.1016/j.cmi.2021.06.036. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Buckley N.E., Hosey A.M., Gorski J.J., Purcell J.W., Mulligan J.M., Harkin D.P., Mullan P.B. BRCA1 regulates IFN-γ signaling through a mechanism involving the type I IFNs. Mol. Cancer Res. 2007;5(3):261–270. doi: 10.1158/1541-7786.MCR-06-0250. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Chahar H.S., Bao X., Casola A. Exosomes and their role in the life cycle and pathogenesis of RNA viruses. Viruses. 2015;7:3204–3225. doi: 10.3390/v7062770. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Chan K.L., Peng B., Umar M.I., Chan C.Y., Sahakyan A.B., Le M.T.N., Kwok C.K. Structural analysis reveals the formation and role of RNA G-quadruplex structures in human mature microRNAs. Chem. Commun. 2018;54(77):10878–10881. doi: 10.1039/c8cc04635b. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Chaudhary N., Weissman D., Whitehead K.A. mRNA vaccines for infectious diseases: principles, delivery and clinical translation. Nat. Rev. Drug Discov. 2021;20:817–838. doi: 10.1038/s41573-021-00283-5. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Chauvineau‐Grenier A., Bastard P., Servajeank A., Gervais A., Rosain J., Jouanguy E., Cobat A., Casanova J.-L., Rossi B. Autoantibodies neutralizing type I interferons in 20% of COVID‐19 deaths in a French hospital. J. Clin. Immunol. 2022;27 doi: 10.1007/s10875-021-01203-3. January. [Epub ahead of print] [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Choi H.S., Lee H.M., Jang Y.-J., Kim C.-H., Ryua C.J. Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein A2/B1 regulates the self-renewal and pluripotency of human embryonic stem cells via the control of the G1/S transition. Stem Cell. 2013;31:2647–2658. doi: 10.1002/stem.1366. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Choi Y.E., Pan Y., Park E., Konstantinopoulos P., De S., D’Andrea A., Chowdhury D. MicroRNAs downregulate homologous recombination in the G1 phase of cycling cells to maintain genomic stability. Elife. 2014;3 doi: 10.7554/eLife.02445. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Choi S., Lee S., Seo J.-W., Kim M.-J., Jeon Y.H., Park J.H., Lee J.K., Yeo N.S. Myocarditis-induced sudden death after BNT162b2 mRNA COVID-19 vaccination in korea: case report focusing on histopathological findings. J. Kor. Med. Sci. 2021;36(40):e286. doi: 10.3346/jkms.2021.36.e286. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Collier D.A., De Marco A., Ferreira I.A.T.M., Meng B., Datir R.P., Walls A.C., et al. Sensitivity of SARS-CoV-2 B.1.1.7 to mRNA vaccine-elicited antibodies. Nature. 2021;593:136–141. doi: 10.1038/s41586-021-03412-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Consoli S., Dono F., Evangelista G., D’Apolito M., Travaglini D., Onofrj M., Bonanni L. Status migrainosus: a potential adverse reaction to Comirnaty (BNT162b2, BioNtech/Pfizer) COVID-19 vaccinea case report. Neurol. Sci. 2021;22:1–4. doi: 10.1007/s10072-021-05741-x. [Epub ahead of print] Nov. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Créange A. A role for interferon-beta in Guillain-Barré Syndrome? BioDrugs. 2000;14(1):1–11. doi: 10.2165/00063030-200014010-00001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Crow A.R., Lazarus A.H. Role of Fcgamma receptors in the pathogenesis and treatment of idiopathic thrombocytopenic purpura. J. Pediatr. Hematol. Oncol. 2003;25(Suppl. 1):S14S18. doi: 10.1097/00043426-200312001-00004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Danese E., Montagnana M., Salvagno G.L., Peserico D., Pighi L., De Nitto S., Henry B.M., Porru S., Lippi G. Comprehensive assessment of humoral response after Pfizer BNT162b2 mRNA Covid-19 vaccination: a three-case series. Clin. Chem. Lab. Med. 2021;59(9):1585–1591. doi: 10.1515/cclm-2021-0339. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
De Andrea M., Ravera R., Gioia D., Gariglio M., Landolfo S. The interferon system: an overview. Eur. J. Paediatr. Neurol. 2002;6:A41–A46. doi: 10.1053/ejpn.2002.0573. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
de Beuckelaer A., Pollard C., Van Lint S., Roose K., Van Hoecke L.V., Naessens T., Udhayakumar V.K., Smet M., Sanders N., Lienenklaus S., et al. Type I interferons interfere with the capacity of mRNA lipoplex vaccines to elicit cytolytic T cell responses. Mol. Ther. 2016;24(11):2012–2020. doi: 10.1038/mt.2016.161. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
de Gonzalo-Calvo D., Benítez I.D., Pinilla L., Carratalá A., Moncusí-Moix A., Gort-Paniello C., Molinero M., González J., Torres G., Bernal M., et al. Circulating microRNA profiles predict the severity of COVID-19 in hospitalized patients. Transl. Res. 2021;236:147–159. doi: 10.1016/j.trsl.2021.05.004. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
De Paolis V., Lorefice E., Orecchini E., Carissimi C., Laudadio I., Fulci V. Epitranscriptomics: a new layer of microRNA regulation in cancer. Cancers. 2021;13(13):3372. doi: 10.3390/cancers13133372. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Decker C.J., Parker R. P-bodies and stress granules: possible roles in the control of translation and mRNA degradation. Cold Spring Harbor Perspect. Biol. 2012;4(9):a012286. doi: 10.1101/cshperspect.a012286. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Delannoy A.S., Hober D., Bouzidi A., Wattre P. Role of interferon alpha (IFN‐α) and interferon gamma (IFN‐γ) in the control of the infection of monocyte‐like cells with Human Cytomegalovirus (HCMV) Microbiol. Immunol. 1999;43(12):1087–1096. [PubMed] [Google Scholar]
Dodick D., Silberstein S. Central sensitization theory of migraine: clinical implications. Headache. 2006;46(Suppl. 4):S18291. doi: 10.1111/j.1526-4610.2006.00602.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Doulberis M., Papaefthymiou A., Kotronis G., Gialamprinou D., Soteriades E.S., Kyriakopoulos A., et al. Does COVID-19 vaccination warrant the classical principle « ofelein i mi vlaptin. Medicina (Kaunas). 2021;57(3):253. doi: 10.3390/medicina57030253. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Dumortiera J. Liver injury after mRNA-based SARS-CoV-2 vaccination in a liver transplant recipient. Clin. Res. Hepatol. Gastroenterol. 2022;46 doi: 10.1016/j.clinre.2021.101743. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Dunn G.P., Bruce A.T., Sheehan K.C.F., Shankaran V., Uppaluri R., Bui J.D., Diamond M.S., Koebel C.M., Arthur C., White J.M., et al. A critical function for type I interferons in cancer immunoediting. Nat. Immunol. 2005;6(7):722–729. doi: 10.1038/ni1213. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Erb H.H., Langlechner R.V., Moser P.L., Handle F., Casneuf T., Verstraeten K., Schlick B., Schäfer G., Hall B., Sasser K., Culig Z., Santer F.R., et al. IL6 sensitizes prostate cancer to the antiproliferative effect of IFNα2 through IRF9. Endocr. Relat. Cancer. 2013;20(5):677. doi: 10.1530/ERC-13-0222. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Erman A.B., Kejner A.E., Norman B.S., Hogikyan D., Feldman E.L. Disorders of cranial nerves IX and X. Semin. Neurol. 2009;29(1):8592. doi: 10.1055/s-0028-1124027. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Eviston T., Croxson G.R., Kennedy P.G.E., Hadlock T., Krishnan A.V. Bell’s palsy: aetiology, clinical features and multidisciplinary care. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 2015;86 doi: 10.1136/jnnp-2014-309563. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Farazi T.A., Hoell J.I., Morozov P., Tuschl T. MicroRNAs in human cancer. Adv. Exp. Med. Biol. 2013;774:1–20. doi: 10.1007/978-94-007-5590-1_1. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Fathy R.A., McMahon D.E., Lee C., Chamberlin G.C., Rosenbach M., Lipoff J.B., Tyagi A., Desai S.R., French L.E., Lim H.W., et al. Varicella-zoster and herpes simplex virus reactivation post-COVID-19 vaccination: a review of 40 cases in an International Dermatology Registry. JEADV. 2022;36(1):e6–e9. doi: 10.1111/jdv.17646. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Fay M.M., Lyons S.M., Ivanov P. RNA G-quadruplexes in biology: principles and molecular mechanisms. J. Mol. Biol. 2017;429(14):2127–2147. doi: 10.1016/j.jmb.2017.05.017. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Feng B., Eknoyan G., Guo Z.S., Jadoul M., Rao H.Y., Zhang W., Wei L. Effect of interferon- alpha-based antiviral therapy on hepatitis C virus-associated glomerulonephritis: a meta-analysis. Nephrol. Dial. Transplant. 2012;27(2):640–646. [PubMed] [Google Scholar]
Finnberg N.K., El-Deiry W.S. TRAIL death receptors as tumor suppressors and drug targets. Cell Cycle. 2008;7(11):1525–1528. doi: 10.4161/cc.7.11.5975. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Forni G., Mantovani A. COVID-19 Commission of Accademia Nazionale dei Lincei, Rome. COVID-19 vaccines: where we stand and challenges ahead. Cell Death Differ. 2021;28(2):626–639. doi: 10.1038/s41418-020-00720-9. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Garg A., Seeliger B., Derda A.A., Xiao K., Gietz A., Scherf K., Sonnenschein K., Pink I., Hoeper M.M., Welte T., et al. Circulating cardiovascular microRNAs in critically ill COVID-19 patients. Eur. J. Heart Fail. 2021;23(3):468–475. doi: 10.1002/ejhf.2096. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Gavras I., Gavras H. Angiotensin II as a cardiovascular risk factor. J. Hum. Hypertens. 2002;16(Suppl. 2):S2–S6. doi: 10.1038/sj.jhh.1001392. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Girardi T., De Keersmaecker K. T-ALL: ALL a matter of translation? Haematologica. 2015;100(3):293–295. doi: 10.3324/haematol.2014.118562. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Goldman S., Bron D., Tousseyn T., Vierasu I., Dewispelaere L., Heimann P., Cogan E., Goldman M. Rapid progression of angioimmunoblastic T cell lymphoma following BNT162b2 mRNA vaccine booster shot: a case report. Front. Med. 2021;8 doi: 10.3389/fmed.2021.798095. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Gordon D.E., Hiatt J., Bouhaddou M., Rezelj V.V., Ulferts S., Braberg H., et al. Comparative host-coronavirus protein interaction networks reveal pan-viral disease mechanisms. Science. 2020;370(6521) doi: 10.1126/science.abe9403. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Gould F.D.H., Lammers A.R., Mayer C.J., German R.Z. Specific vagus nerve lesion have distinctive physiologic mechanisms of dysphagia. Front. Neurol. 2019;10:1301. doi: 10.3389/fneur.2019.01301. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Guo X., Namekata K., Kimura A., Harada C., Harada T. The renin-angiotensin system regulates neurodegeneration in a mouse model of optic neuritis. Am. J. Pathol. 2017;187(12):2876–2885. doi: 10.1016/j.ajpath.2017.08.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Hadjadj J., Yatim N., Barnabei L., Corneau A., Boussier J., Smith N., Péré H., Charbit B., Bondet V., Chenevier-Gobeaux C., et al. Impaired type I interferon activity and inflammatory responses in severe COVID-19 patients. Science. 2020;369(6504):718–724. doi: 10.1016/j.cell.2020.04.026. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Han S.H., Choe J. Diverse molecular functions of m6A mRNA modification in cancer. Exp. Mol. Med. 2020;52(5):738–749. doi: 10.1038/s12276-020-0432-y. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Heise R., Amann P.M., Ensslen S., Marquardt Y., Czaja K., Joussen S., Beer D., Abele R., Plewnia G., Tampé R., et al. Interferon alpha signaling and its relevance for the upregulatory effect of transporter proteins associated with antigen processing (TAP) in patients with malignant melanoma. PLoS One. 2016;11(1) doi: 10.1371/journal.pone.0146325. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Herdy B., Mayer C., Varshney D., Marsico G., Murat P., Taylor C., D’Santos C., Tannahill D., Balasubramanian S. Analysis of NRAS RNA G-quadruplex binding proteins reveals DDX3X as a novel interactor of cellular G-quadruplex containing transcripts. Nucleic Acids Res. 2018;46(21):11592–11604. doi: 10.1093/nar/gky861. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Hoagland D.A., Møller R., Uhl S.A., Oishi K., Frere J., Golynker T., Horiuchi S., Panis M., Blanco-Melo D., Sachs D., et al. Leveraging the antiviral type I interferon system as a first line of defense against SARS-CoV-2 pathogenicity. Immunity. 2021;54 doi: 10.1016/j.immuni.2021.01.017. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Honda K., Takaoka A., Taniguchi T. Type I interferon [corrected] gene induction by the interferon regulatory factor family of transcription factors. Immunity. 2006;25(3):349–360. doi: 10.1016/j.immuni.2006.08.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Honke K. Biosynthesis and biological function of sulfoglycolipids. Proc. Jpn. Acad. Ser. B Phys. Biol. Sci. 2013;89(4) doi: 10.2183/pjab.89.129. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Hou X., Zaks T., Langer R., Dong Y. Lipid nanoparticles for mRNA delivery. Nat. Rev. Mater. 2021;6:1078–1094. doi: 10.1038/s41578-021-00358-0. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Huang Y., Cai X., Song X., Tang H., Huang Y., Xie S., Hu Y. Steroids for preventing recurrence of acute severe migraine headaches: a meta-analysis. Eur. J. Neurol. 2013;20(8):1184–1190. doi: 10.1111/ene.12155. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Huang F.T., Sun J., Zhang L., He X., Zhu Y.H., Dong H.J., Wang H.-Y., Zhu L., Zou Huang J.W., et al. Role of SIRT1 in hematologic malignancies. J. Zhejiang Univ. – Sci. B. 2019;20(5):391–398. doi: 10.1631/jzus.B1900148. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Ilyas A.A., Mithen F.A., Dalakas M.C., Wargo M., Chen Z.W., Bielory L., Cook S.D. Antibodies to sulfated glycolipids in Guillain-Barr syndrome. J. Neurol. Sci. 1991;105(1):108–117. doi: 10.1016/0022-510x(91)90126-r. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Ivanova E.N., Devlin J.C., Buus T.B., Koide A., Cornelius A., Samanovic M.I., Herrera A., Zhang C., Desvignes L., Odum N., Ulrich R., Mulligan M.J., Koide S., Ruggles K.V., Herati R.S., Koralov S.B. Discrete immune response signature to SARS-CoV-2 mRNA vaccination versus infection. medRxiv preprint. 2021 doi: 10.1101/2021.04.20.21255677. April 21. [CrossRef] [Google Scholar]
Iwanaga J., Fukuoka H., Fukuoka N., Yutori H., Ibaragi S., Tubbs R.S. A narrative review and clinical anatomy of Herpes zoster infection following COVID‐19 vaccination. Clin. Anat. 2021;35(1):45–51. doi: 10.1002/ca.23790. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Jain S.S., Steele J.M., Fonseca B., Huang S., Shah S., Maskatia S.A., Buddhe S., Misra N., Ramachandran P., Gaur L., et al. COVID-19 vaccination–associated myocarditis in adolescents. Pediatrics. 2021;148(5) doi: 10.1542/peds.2021-053427. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Jang S.K., Pestova T.V., Hellen C.U.T., Witherell G.W., Wimmer E. Cap-independent translation of picornavirus RNAs: structure and function of the internal ribosomal entry site. Enzyme. 1990;44:292–309. doi: 10.1159/000468766. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Jaubert C., Bedrat A., Bartolucci L., Di Primo C., Ventura M., Mergny J.-L., Amrane S., Andreola M.-L. RNA synthesis is modulated by G-quadruplex formation in Hepatitis C virus negative RNA strand. Sci. Rep. 2018;8:8120. doi: 10.1038/s41598-018-26582-3. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Jego G.A., Palucka K., Blanck J.-P., Chalouni C., Pascual V., Banchereau J. Plasmacytoid dendritic cells induce plasma cell differentiation through type I interferon and interleukin 6. Immunity. 2003;19 doi: 10.1016/s1074-7613(03)00208-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Jeong M., Ocwieja K.E., Han D., Wackym P.A., Zhang Y., Brown A., Moncada C., Vambutas A., Kanne T., Crain R., et al. Direct SARS-CoV-2 infection of the human inner ear may underlie COVID-19-associated audiovestibular dysfunction. Commun. Med. 2021;1:44. doi: 10.1038/s43856-021-00044-w. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Jhaveri R. The COVID-19 mRNA vaccines and the pandemic: do they represent the beginning of the end or the end of the beginning? Clin. Therapeut. 2021;43(3):549–556. doi: 10.1016/j.clinthera.2021.01.014. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Jiang H., Mei Y.-F. SARS-CoV-2 spike impairs DNA damage repair and inhibits V(D)J recombination in vitro. Viruses. 2021;13(2056) doi: 10.3390/v13102056. [CrossRef] [Google Scholar]
Kaczmarek R., El Ekiaby M., Hart D.P., Hermans C., Makris M., Noone D., O’Mahony B., Page D., Peyvandi F., Pipe S.W., et al. Vaccination against COVID‐19: rationale, modalities and precautions for patients with haemophilia and other inherited bleeding disorders. Haemophilia. 2021;27(4):515–518. doi: 10.1111/hae.14271. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kakarougkas A., Ismail A., Klement K., Goodarzi A.A., Conrad S., Freire R., Shibata A., Lobrich M., Jeggo P.A. Opposing roles for 53BP1 during homologous recombination. Nucleic Acids Res. 2013;41(21):9719–9731. doi: 10.1093/nar/gkt729. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kalra R.S., Kandimalla R. Engaging the spikes: heparan sulfate facilitates SARS-CoV-2 spike protein binding to ACE2 and potentiates viral infection. Signal Transduct. Targeted Ther. 2021;6:39. doi: 10.1038/s41392-021-00470-1. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kampf G. The epidemiological relevance of the COVID-19-vaccinated population is increasing. Lancet. Reg. Health – Europ. 2021;11 doi: 10.1016/j.lanepe.2021.100272. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kampf G. The epidemiological relevance of the COVID-19-vaccinated population is increasing. Lancet Reg. Health – Europ. 2021;11 doi: 10.1016/j.lanepe.2021.100272. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Karikó K., Buckstein M., Ni H., Weissman D. Suppression of RNA recognition by toll-like receptors: the impact of nucleoside modification and the evolutionary origin of RNA. Immunity. 2005;23 doi: 10.1016/j.immuni.2005.06.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Katalin Karikó K., Muramatsu H., Welsh F.A., Ludwig J., Kato H., Akira S., Weissman D. Incorporation of pseudouridine into mRNA yields superior nonimmunogenic vector with increased translational capacity and biological stability. Mol. Ther. 2008;16:1833–1840. doi: 10.1038/mt.2008.200. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Katsikas Triantafyllidis K., Giannos P., Mian I.T., Kyrtsonis G., Kechagias K.S. Varicella zoster virus reactivation following COVID-19 vaccination: a systematic review of case reports. Vaccines. 2021;9(9):1013. doi: 10.3390/vaccines9091013. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kaulen L.D., Doubrovinskaia S., Mooshage C., Jordan B., Purrucker J., Haubner C., Seliger C., Lorenz H.-M., Nagel S., Wildemann B., Bendszus M., Wick W., Schnenberger S. Neurological autoimmune diseases following vaccinations against SARS-CoV-2: a case series. Eur. J. Neurol. 2021:1–9. doi: 10.1111/ene.15147. [Epub ahead of print] [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kaur A., Fang C.M. An overview of the human immune system and the role of interferon regulatory factors (IRFs) Prog. Microb. Mol. Biol. 2020;3(1) doi: 10.36877/pmmb.a0000129. 2020. [CrossRef] [Google Scholar]
Kelton J.G., Arnold D.M., Nazy I. Lessons from vaccine-induced immune thrombotic thrombocytopenia. Nat. Rev. Immunol. 2021;21(12):753–755. doi: 10.1038/s41577-021-00642-8. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Khayat-Khoei M., Bhattacharyya S., Katz J., Harrison D., Tauhid S., Bruso P., Houtchens M.K., Edwards K.R., Bakshi R. COVID-19 mRNA vaccination leading to CNS inflammation: a case series. J. Neurol. 2021 Sep 4:1–14. doi: 10.1007/s00415-021-10780-7. [Epub ahead of print] [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kimura T., Nakajima T., Kamijo Y., Tanaka N., Wang L., Hara A., Sugiyama E., Tanaka E., Gonzalez F.J., Aoyama T. Hepatic cerebroside sulfotransferase is induced by PPAR activation in mice. PPAR Res. 2012 doi: 10.1155/2012/174932. 2012. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Knuckles P., Bühler M. Adenosine methylation as a molecular imprint defining the fate of RNA. FEBS Lett. 2018;592(17):2845–2859. doi: 10.1002/1873-3468.13107. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kolumam G.A., Thomas S., Thompson L.J., Sprent J., Murali-Krishna K. Type I interferons act directly on CD8 T cells to allow clonal expansion and memory formation in response to viral infection. J. Exp. Med. 2005;202(5) doi: 10.1084/jem.20050821. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Koo J.W., Russo S.J., Ferguson D., Nestler E.J., Duman R.S. Nuclear factor-kappaB is a critical mediator of stress-impaired neurogenesis and depressive behavior. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2010;107(6):2669–2674. doi: 10.1073/pnas.0910658107. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kothandan V.K., Kothandan S., Kim D.H., Byun Y., Lee Y.-K., Park I.-K., Hwang S.R. Crosstalk between stress granules, exosomes, tumour antigens, and immune cells: significance for cancer immunity. Vaccines. 2020;8(2):172. doi: 10.3390/vaccines8020172. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kudla G., Lipinski L., Caffin F., Helwak A., Zylicz M. High guanine and cytosine content increases mRNA levels in mammalian cells. PLoS Biol. 2006;4(6) doi: 10.1371/journal.pbio.0040180. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Kuwahara M., Kusunoki S. Mechanism and spectrum of anti-glycolipid antibody-mediated chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Clin. Exper. Neuroimmunol. 2018;9(1):65–74. doi: 10.1111/cen3.12452. [CrossRef] [Google Scholar]
Kwok H.F. Review of COVID-19 vaccine clinical trials — A puzzle with missing pieces. Int. J. Biol. Sci. 2021;7(6):1461. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Kyriakopoulos A.M., McCullough P.A. Synthetic mRNAs; their analogue caps and contribution to disease. Diseases. 2021;9(3):57. doi: 10.3390/diseases9030057. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Lanz T.V., Ding Z., Ho P.P., Luo J., Agrawal A.N., Srinagesh H., Axtell R., Zhang H., Platten M., Wyss-Coray T., Steinman L. Angiotensin II sustains brain inflammation in mice via TGF-beta. J. Clin. Invest. 2010;120(8):2782–2794. doi: 10.1172/JCI41709. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Lazarus R., Klompas M., Bernstein S. 2010. Electronic Support for Public Health–Vaccine Adverse Event Reporting System (ESP: VAERS). Grant. Final Report, Grant ID: R18 HS; p. 17045. [Google Scholar]
Lee E.-J., Cines D.B., Gernsheimer T., Kessler C., Michel M., Tarantino M.D., Semple J.W., Arnold D.M., Godeau B., Lambert M.P., Bussel J.B. Thrombocytopenia following pfizer and Moderna SARS-CoV-2 vaccination. Am. J. Hematol. 2021;96(5):534–537. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Lemberger T., Staels B., Saladin R., Desvergne B., Auwerx J., Wahli W. Regulation of the peroxisome proliferator-activated receptor alpha gene by glucocorticoids. J. Biol. Chem. 1994;269(40):24527–24530. doi: 10.1093/toxsci/kfn260. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Lensen R., Netea M.G., Rosendaal F.R. Hepatitis C virus reactivation following COVID-19 vaccination — A case report. Int. Med. Case Rep. J. 2021;14:573–575. doi: 10.2147/IMCRJ.S328482. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Letarov A.V., Babenko V.V., Kulikov E.E. Free SARS-CoV-2 spike protein S1 particles may play a role in the pathogenesis of COVID-19 infection. Biochemistry (Mosc.) 2021;86(3):257–261. doi: 10.1134/S0006297921030032. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Leung D.W., Amarasinghe G.K. When your cap matters: structural insights into self vs non-self recognition of 5′ RNA by immunomodulatory host proteins. Curr. Opin. Struct. Biol. 2016;36:133–141. doi: 10.1016/j.sbi.2016.02.001. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Li Y., Huang R., Wang L., Hao J., Zhang Q., Ling R., Yun J. Micro RNA‐762 promotes breast cancer cell proliferation and invasion by targeting IRF7 expression. Cell Prolif. 2015;48(6):643–649. doi: 10.1111/cpr.12223. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Lindenmann J. From interference to interferon: a brief historical introduction. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 1982;299(1094):3–6. [PubMed] [Google Scholar]
Liu T., Khanna K.M., Chen X., Fink D.J., Hendricks R.L. CD8(+) T cells can block herpes simplex virus type 1 (HSV-1) reactivation from latency in sensory neurons. J. Exp. Med. 2000;191(9):1459–1466. doi: 10.1084/jem.191.9.1459. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Liu J., Wang J., Xu J., Xia H., Wang Y., Zhang C., Chen W., Zhang H., Liu Q., Zhu R., et al. Comprehensive investigations revealed consistent pathophysiological alterations after vaccination with COVID-19 vaccines. Cell Discov. 2021;7(1):99. doi: 10.1038/s41421-021-00329-3. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Lladó I., Fernández-Bernáldez A., Rodríguez-Jiménez P. Varicella zoster virus reactivation and mRNA vaccines as a trigger. JAAD. Case Rep. 2021;15:62–63. doi: 10.1016/j.jdcr.2021.07.011. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Lu Y., Harada M., Kamijo Y., Nakajima T., Tanaka N., Sugiyama E., Kyogashima M., Gonzalez F.J., Aoyama T. Peroxisome proliferator-activated receptor attenuates high-cholesterol diet-induced toxicity and pro-thrombotic effects in mice. Arch. Toxicol. 2019;93(1) doi: 10.1007/s00204-018-2335-4. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
MacFarlane M., Kohlhaas S.L., Sutcliffe M.J., Dyer M.J., Cohen G.M. TRAIL receptor-selective mutants signal to apoptosis via TRAIL-R1 in primary lymphoid malignancies. Cancer Res. 2005;65(24):11265–11270. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-05-2801. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Maleki A. COVID-19 recombinant mRNA vaccines and serious ocular inflammatory side effects: real or coincidence? J. Ophthalmic Vis. Res. 2021;16(3) doi: 10.18502/jovr.v16i3.9443. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Mann R., Sekhon S., Sekhon S. Drug-induced liver injury after COVID-19 vaccine. Cureus. 2021;13(7) doi: 10.7759/cureus.16491. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Marcus J., Honigbaum S., Shroff S., Honke K., Rosenbluth J., Dupree J.L. Sulfatide is essential for the maintenance of CNS myelin and axon structure. Glia. 2006;53(4):372–381. doi: 10.1002/glia.20292. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Martini P.G.V., Guey L.T. A new era for rare genetic diseases: messenger RNA therapy. Hum. Gene Ther. 2019;30(10):1180–1189. doi: 10.1089/hum.2019.090. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Matsuoka M., Tani K., Asano S. Interferon-alpha-induced G1 phase arrest through upregulated expression of CDK inhibitors, p19Ink4D and p21Cip1 in mouse macrophages. Oncogene. 1998;16:2075–2086. doi: 10.1038/sj.onc.1201745. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Mauro V.P., Chappell S.A. A critical analysis of codon optimization in human therapeutics. Trends Mol. Med. 2014;20(11):604–613. doi: 10.1016/j.molmed.2014.09.003. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
McCarthy C., Carrea A., Diambra L. Bicodon bias can determine the role of synonymous SNPs in human diseases. BMC Genom. 2017;18(1):227. doi: 10.1186/s12864-017-3609-6. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
McKenzie S.E., Taylor S.M., Malladi P., Yuhan H., Cassel D.L., Chien P., Schwartz E., Schreiber A.D., Surrey S., Reilly M.P. The role of the human Fc receptor FcRIIA in the immune clearance of platelets: a transgenic mouse model. J. Immunol. 1999;162:4311–4318. http://www.jimmunol.org/content/162/7/4311 [PubMed] [Google Scholar]
McKernan K., Kyriakopoulos A.M., McCullough P.A. Differences in vaccine and SARS-CoV-2 replication derived mRNA: implications for cell biology and future disease. OSF Prepr. 2021 doi: 10.31219/osf.io/bcsa6. November 26. [CrossRef] [Google Scholar]
McLachlan S., Osman M., Dube K., Chiketero P., Choi Y., Fenton N. Analysis of COVID-19 vaccine death reports from the vaccine adverse events reporting system (VAERS) database. Preprint. 2021 doi: 10.13140/RG.2.2.26987.26402. [CrossRef] [Google Scholar]
Mulligan M.J., Lyke K.E., Kitchin N., Absalon J., Gurtman A., Lockhart S., Neuzil K., Raabe V., Bailey R., Swanson K.A., Li P., Koury K., Kalina W., Cooper D., Fontes-Garfias C., Shi P.-Y., Türeci Ö., Tompkins K.R., Walsh E.E., Frenck R., Falsey A.R., Dormitzer P.R., Gruber W.C., Şahin U., Jansen K.U. Phase I/II study of COVID-19 RNA vaccine BNT162b1 in adults. Nature. 2020;586(7830):589–593. doi: 10.1038/s41586-020-2639-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Mungoven T.J., Meylakh N., Marciszewski K.K., Macefield V.G., Macey P.M., Henderson L.A. Microstructural changes in the trigeminal nerve of patients with episodic migraine assessed using magnetic resonance imaging. J. Headache Pain. 2020;21:59. doi: 10.1186/s10194-020-01126-1. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Musella M., Manic G., de Maria R., Vitale I., Sistigue A. Type-I-interferons in infection and cancer: unanticipated dynamics with therapeutic implications. OncoImmunology. 2017;6(5) doi: 10.1080/2162402X.2017.1314424. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Nandha R., Singh H. Renin angiotensin system: a novel target for migraine prophylaxis. Indian J. Pharmacol. 2012;44(2) doi: 10.4103/0253-7613.93840. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Olsthoorn R.C. G-quadruplexes within prion mRNA: the missing link in prion disease? Nucleic Acids Res. 2014;42:9327–9333. doi: 10.1093/nar/gku559. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Orlandini von Niessen A.G., Poleganov M.A., Rechner C., Plaschke A., Kranz L.M., Fesser S., Diken M., Löwer M., Vallazza B., Beissert T., et al. Improving mRNA-based therapeutic gene delivery by expression-augmenting 3’ UTRs identified by cellular library screening. Mol. Ther. 2019;27(4):824–836. doi: 10.1016/j.ymthe.2018.12.011. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Otsuka H., Fukao A., Funakami Y., Duncan K.E., Fujiwara T. Emerging evidence of translational control by AU-rich element-binding proteins. Front. Genet. 2019;10:332. doi: 10.3389/fgene.2019.00332.g. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Oudit G.Y., Kassiri Z., Jiang C., Liu P.P., Poutanen S.M., Penninger J.M., Butany J. SARS coronavirus modulation of myocardial ACE2 expression and inflammation in patients with SARS. Eur. J. Clin. Invest. 2009;39(7) doi: 10.1111/j.1365-2362.2009.02153. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Ozaki T., Nakagawara A. Role of p53 in cell death and human cancers. Cancers. 2011;3(1):994–1013. doi: 10.3390/cancers3010994. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Panier S., Boulton S.J. Double-strand break repair: 53BP1 comes into focus. Nat. Rev. 2014;15:9. doi: 10.1038/nrm3719. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Pardi N., Hogan M.J., Porter F.W., Weissman D. mRNA vaccines – a new era in vaccinology. Nat. Rev. Drug Discov. 2018;17(4):261–279. doi: 10.1038/nrd.2017.243. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Park J.W., Lagniton P., Liu Y., Xu R.H. mRNA vaccines for COVID-19: what, why and how. Int. J. Biol. Sci. 2021;17(6):1446–1460. doi: 10.7150/ijbs.59233. 2021. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Passariello M., Vetrei C., Amato F., De Lorenzo C. Interactions of spike-RBD of SARS-CoV-2 and platelet factor 4: new insights in the etiopathogenesis of thrombosis. Int. J. Mol. Sci. 2021;22:8562. doi: 10.3390/ijms22168562. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Passegu E., Ernst P.A. IFN-alpha wakes up sleeping hematopoietic stem cells. Nat. Med. 2009;15(6) doi: 10.1038/nm0609-612. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Perricone C., Ceccarelli F., Nesher G., Borella E., Odeh Q., Conti F., Shoenfeld Y., Valesini G. Immune thrombocytopenic purpura (ITP) associated with vaccinations: a review of reported cases. Immunol. Res. 2014;60:226–235. doi: 10.1007/s12026-014-8597-x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Psichogiou M., Karabinis A., Poulakou G., Antoniadou A., Kotanidou A., Degiannis D., Pavlopoulou I.D., Chaidaroglou A., Roussos S., Mastrogianni E., et al. Comparative immunogenicity of BNT162b2 mRNA vaccine with natural COVID-19 infection. Vaccines (Basel) 2021;9(9):1017. doi: 10.3390/vaccines9091017. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Psichogiou M., Samarkos M., Mikos N., Hatzakis A. Reactivation of Varicella zoster virus after vaccination for SARS-CoV-2. Vaccines. 2021;9:572. doi: 10.3390/vaccines9060572. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Qiu X.-K., Ma J. Alteration in microRNA-155 level correspond to severity of coronary heart disease. Scand. J. Clin. Lab. Invest. 2018;78(3):219–223. doi: 10.1080/00365513.2018.1435904. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Qiu S., Palavicini J.P., Wang J., Gonzalez N.S., He S., Dustin E., Zou C., Ding L., Bhattacharjee A., Van Skike C.E., et al. Adult-onset CNS myelin sulfatide deficiency is sufficient to cause Alzheimer’s disease-like neuroinflammation and cognitive impairment. Mol. Neurodegener. 2021;16:64. doi: 10.1186/s13024-021-00488-7. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Röltgen K., Nielsen S.C.A., Silva O., Younes S.F., Zaslavsky M., Costales C., Yang F., Wirz O.F., Solis D., Hoh R.A. Immune imprinting, breadth of variant recognition and germinal center response in human SARS-CoV-2 infection and vaccination. Cell. 2022 doi: 10.1016/j.cell.2022.01.018. Jan 25; S0092-8674(22)00076-9. [Epub ahead of print] [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Rasmussen S.A., Abul-Husn N.S., Casanova J.L., Daly M.J., Rehm H.L., Murray M.F. The intersection of genetics and COVID-19 in 2021: preview of the 2021 Rodney Howell Symposium. Genet. Med. 2021;23(6):1001–1003. doi: 10.1038/s41436-021-01113-0. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Ratajczak M.Z., Ratajczak J. Horizontal transfer of RNA and proteins between cells by extracellular microvesicles: 14 years later. Clin. Transl. Med. 2016;5:7. doi: 10.1186/s40169-016-0087-4. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Rhea E.M., Logsdon A.F., Hanse K.M., Williams L.M., Reed M.J., Baumann K.K., Holden S.J., Raber J., Banks W.A., Erickson M.A. The S1 protein of SARS-CoV-2 crosses the blood-brain barrier in mice. Nat. Neurosci. 2021;24:368–378. doi: 10.1038/s41593-020-00771-8. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Rodrigues Figueiredo R., Aparecida Azevedo A., De Oliveira Penido N. Positive association between tinnitus and arterial hypertension. Front. Neurol. 2016;7:171. doi: 10.3389/fneur.2016.00171. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Rodriguez-Perez A.I., Borrajo A., Rodriguez-Pallares J., Guerra M.J., Labandeira-Garcia J.L. Interaction between NADPH-oxidase and Rho-kinase in angiotensin II-induced microglial activation. Glia. 2015;63:466e482. doi: 10.1002/glia.22765. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Rose J. Critical appraisal of VAERS pharmacovigilance: is the U.S. vaccine adverse events reporting system (VAERS) a Functioning pharmacovigilance system? Sci. Publ. Health Pol. the Law. 2021;3:100–129. [Google Scholar]
Rusk N. When microRNAs activate translation. Nat. Methods. 2008;5:122–123. doi: 10.1038/nmeth0208-122a. [CrossRef] [Google Scholar]
Ruther U., Nunnensiek C., Muller H.A., Bader H., May U., Jipp P. Interferon alpha (IFN alpha 2a) therapy for herpes virus-associated inflammatory bowel disease (ulcerative colitis and Crohn’s disease) Hepato-Gastroenterology. 1998;45(21):691–699. doi: 10.1111/j.1348-0421.1999.tb03365.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Sakai Y., Ohga S., Tonegawa Y., Takada H., Nakao F., Nakayama H., Aoki T., Yamamori S., Hara T. Interferon-alpha therapy for chronic active Epstein-Barr virus infection: potential effect on the development of T- lymphoproliferative disease. J. Pediatr. Hematol. Oncol. 1998;20(4):342–346. [PubMed] [Google Scholar]
Sayers T.J. Targeting the extrinsic apoptosis signaling pathway for cancer therapy. Cancer Immunol. Immunother. 2011;60(8):1173–1180. doi: 10.1007/s00262-011-1008-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Schmidt N., Lareau C.A., Keshishian H., Ganskih S., Schneider C., Hennig T., Melanson R., Werner S., Wei Y., Zimmer M., et al. The SARS-CoV-2 RNA-protein interactome in infected human cells. Nat. Microbiol. 2021;6(3):339–353. doi: 10.1038/s41564-020-00846-z. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Schneider W.M., Chevillotte M.D., Rice C.M. Interferon-stimulated genes: a complex web of host defenses. Anni. Rev. Immunol. 2014;32:513–545. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Sekiguchi K., Watanabe N., Miyazaki N., Ishizuchi K., Iba C., Tagashira Y., Uno S., Shibata M., Hasegawa N., Takemura R., et al. Incidence of headache after COVID-19 vaccination in patients with history of headache: a cross-sectional study. Cephalalgia. 2021 doi: 10.1177/03331024211038654. [Epub ahead of print. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Seneff S., Nigh G. Worse than the disease? Reviewing some possible unintended consequences of the mRNA vaccines against COVID-19. IJVTPR. 2021;2(1):38–79. [Google Scholar]
Shabalina S.A., Spiridonov N.A., Kashina A. Sounds of silence: synonymous nucleotides as a key to biological regulation and complexity. Nucleic Acids Res. 2013;41(4):2073–2094. doi: 10.1093/nar/gks1205. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Shaw G., Morse S., Ararat M., Graham F.L. Preferential transformation of human neuronal cells by human adenoviruses and the origin of HEK 293 cells. Faseb. J. 2002;16(8):869–871. doi: 10.1096/fj.01-0995fje. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Shitrit P., Zuckerman N.S., Mor O., Gottesman B.-S., Chowers M. Nosocomial outbreak caused by the SARS-CoV-2 Delta variant in a highly vaccinated population, Israel, July 2021. Euro Surveill. 2021;26(39) doi: 10.2807/1560-7917.ES.2021.26.39.2100822. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Shrotri M., Navaratnam A.M., Nguyen V., Byrne T., Geismar C., Fragaszy E., Beale S., Fong W.L.E., Patel P., Kovar J., et al. Spike-antibody waning after second dose of BNT162b2 or ChAdOx1. Lancet. 2021;398(10298):385–387. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Simone A., Herald J., Chen A. Acute myocarditis following COVID-19 mRNA vaccination in adults aged 18 years or older. JAMA Intern. Med. 2021;181(12):1668–1670. doi: 10.1001/jamainternmed.2021.5511. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Small E.M., Olson E.N. Pervasive roles of microRNAs in cardiovascular biology. Nature. 2011;469(7330):336–342. doi: 10.1038/nature09783. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Sola I., Almazán F., Zúñiga S., Enjuanes L. Continuous and discontinuous RNA synthesis in coronaviruses. Ann. Rev. Virol. 2015;2(1):265–288. doi: 10.1146/annurev-virology-100114-055218. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Solis M., Goubau D., Romieu-Mourez R., Genin P., Civas A., Hiscott J. Distinct functions of IRF-3 and IRF-7 in IFN-alpha gene regulation and control of anti-tumor activity in primary macrophages. Biochem. Pharmacol. 2006;72(11):1469–1476. doi: 10.1016/j.bcp.2006.06.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Spiegel J., Adhikari S., Balasubramanian S. The structure and function of DNA G-quadruplexes. Trend. Chem. 2020;2(2):123–136. doi: 10.1016/j.trechm.2019.07.002. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Stertz S., Hale B.G. Interferon system deficiencies exacerbating severe pandemic virus infections. Trends Microbiol. 2021;29(11):973–982. doi: 10.1016/j.tim.2021.03.001. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Suberbielle E., Djukic B., Evans M., Kim D.H., Taneja P., Wang X., Finucane M., Knox J., Ho K., Devidze N., et al. DNA repair factor BRCA1 depletion occurs in Alzheimer brains and impairs cognitive function in mice. Nat. Commun. 2015;6:8897. doi: 10.1038/ncomms9897. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Subramanian, S.V.; Kumar, A. Increases in COVID-19 are unrelated to levels of vaccination across 68 countries and 2947 counties in the United States. Eur. J. Epidemiol. 2021, 1-4. doi: 10.1007/s10654-021-00808-7. [PMC free article] [PubMed]
Sundstedt A., Celander M., Hedlund G. Combining tumor-targeted superantigens with interferon-alpha results in synergistic anti-tumor effects. Int. Immunopharm. 2008;8(3):442–452. doi: 10.1016/j.intimp.2007.11.006. 2008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Svitkin U.V., Herdy B., Costa-Mattioli M., Gingras A.-C., Raught B., Sonenberg N. Eukaryotic translation initiation factor 4E availability controls the switch between cap-dependent and internal ribosomal entry site-mediated translation. Mol. Cell Biol. 2005;25(23):10556–10565. doi: 10.1128/MCB.25.23.10556-10565.2005. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Takaoka A., Tamura T., Taniguchi T. Interferon regulatory factor family of transcription factors and regulation of oncogenesis. Cancer Sci. 2008;99(3):467–478. doi: 10.1111/j.1349-7006.2007.00720. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Testa U. TRAIL/TRAIL‐R in hematologic malignancies. J. Cell. Biochem. 2010;110(1):21–34. doi: 10.1002/jcb.22549. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Tetz G., Tetz V. Prion-like domains in spike protein of SARS-CoV-2 differ across its variants and enable changes in affinity to ACE2. Microorganisms. 2022;10:280. doi: 10.3390/microorganisms10020280. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Tian W.-L., Guo R., Wang F., Jiang Z.-X., Tang P., Huang Y.-M., Sun L. The IRF9-SIRT1-P53 axis is involved in the growth of human acute myeloid leukemia. Exp. Cell Res. 2018;365:185–193. doi: 10.1016/j.yexcr.2018.02.036. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Timmers L.F.S.M., Peixoto J.V., Ducati R.G., Bachega J.F.R., de Mattos Pereira L., Caceres R.A., Majolo F., da Silva G.L., Anton D.B., Dellagostin O.A., Henriques J.A.P., Xavier L.L., Goettert M.I., Laufer S. SARS-CoV-2 mutations in Brazil: from genomics to putative clinicalconditions. Sci. Rep. 2021;11:11998. doi: 10.1038/s41598-021-91585-6. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Tronvik E., Stovner L.J., Helde G., Sand T., Bovim G. Prophylactic treatment of migraine with an angiotensin II receptor-blocker: a randomized controlled trial. JAMA. 2003;289(1):65–69. doi: 10.1001/jama.289.1.65. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Troya J., Bastard P., Planas-Serra L., Ryan P., Ruiz M., de Carranza M., Torres J., Martnez A., Abel L., Casanova J.-L., Pujol A. Neutralizing autoantibodies to type I IFNs in >10% of patients with severe COVID-19 pneumonia hospitalized in Madrid, Spain. J. Clin. Immunol. 2021;41 doi: 10.1007/s10875-021-01036-0. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Tsuno T., Mejido J., Zhao T., Morrow A., Zoon K.C. IRF9 is a key factor for eliciting the antiproliferative activity of IFN-α J. Immunother. 2009;32(8):803. doi: 10.1097/CJI.0b013e3181ad4092. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Uranaka T., Kashio A., Ueha R., Sato T., Bing H., Ying G., Kinoshita M., Kondo K., Yamasoba T. Expression of ACE2, TMPRSS2, and furin in mouse ear tissue, and the implications for SARS-CoV-2 infection. Laryngoscope. 2021;131(6):E2013–E2017. doi: 10.1002/lary.29324. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
van der Wijst M.G.P., Vazquez S.E., Hartoularos G.C., Bastard P., Grant T., Bueno R.>, Lee D.S., Greenland J.R., Sun Y., Perez R., et al. Type I interferon autoantibodies are associated with systemic immune alterations in patients with COVID-19. Sci. Transl. Med. 2021;13(612) doi: 10.1126/scitranslmed.abh2624. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Van Lint S., Renmans D., Broos K., Dewitte H., Lentacker I., Heirman C., Breckpot K., Thielemans K. The ReNAissanCe of mRNA-based cancer therapy. Expert Rev. Vaccines. 2015;14(2):235–251. doi: 10.1586/14760584.2015.957685. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Vanderlugt C.L., Miller S.D. Epitope spreading in immune-mediated diseases: implications for immunotherapy. Nat. Rev. Immunol. 2002;2:85–95. doi: 10.1038/nri724. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Verweij M.C., Wellish M., Whitmer T., Malouli D., Lapel M., Jonjić S., Haas J.G., DeFilippis V.R., Mahalingam R., Früh K. Varicella viruses inhibit interferon-stimulated JAK-STAT signaling through multiple mechanisms. PLoS Pathog. 2015;11(5) doi: 10.1371/journal.ppat.1004901. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wang X.-A., Zhang R., Jiang D., Deng W., Zhang S., Deng S., Zhong J., Wang T., Zhu L.-H., Yang L., et al. Interferon regulatory factor 9 protects against hepatic insulin resistance and steatosis in male mice. Hepatology. 2013;58(2):603–616. doi: 10.1002/hep.26368. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wang H., Hu H., Zhang K. Overview of interferon: characteristics, signaling and anti-cancer effect. Arch. Biotechnol. Biomed. 2017;1:1–16. [Google Scholar]
Wang C., Zhang C., Liu L., A X., Chen B., Li Y., Du J. Macrophage-derived mir-155-containing exosomes suppress fibroblast proliferation and promote fibroblast inflammation during cardiac injury. Mol. Ther. 2017;25(1):192–204. doi: 10.1016/j.ymthe.2016.09.001. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wang N., Zhan Y., Zhu L., Hou Z., Liu F., Song P., Qiu F., Wang X., Zou X., Wan D., et al. Retrospective multicenter cohort study shows early interferon therapy is associated with favorable clinical responses in COVID-19 patients. Cell Host Microbe. 2020;28(3):455–464. doi: 10.1016/j.chom.2020.07.005. e2. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wang Y., Nakajima T., Gonzalez F.J., Tanaka N. PPARs as metabolic regulators in the liver: lessons from liver-specific PPAR-null mice. Int. J. Mol. Sci. 2020;21:2061. doi: 10.3390/ijms21062061. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wang E., Thombre R., Shah Y., Latanich R., Wang J. G-Quadruplexes as pathogenic drivers in neurodegenerative disorders. Nucleic Acids Res. 2021;49(9):4816–4830. doi: 10.1093/nar/gkab164. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wei H., Chen Q., Lin L., Sha C., Li T., Liu Y., Yin X., Xu Y., Chen L., Gao W., Li Y., Zhu X. Regulation of exosome production and cargo sorting. Int. J. Biol. Sci. 2021;17(1):163–177. doi: 10.7150/ijbs.53671. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Weikert U., Kühl U., Schultheiss H.-P., Rauch U. Platelet activation is increased in patients with cardiomyopathy: myocardial inflammation and platelet reactivity. Platelets. 2002;13(8):487–491. doi: 10.1080/0953710021000057857. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Weiner J., Lewis D., Maertzdorf J., Mollenkopf H., Bodinham C., Pizzoferro K., Linley C., Greenwood A., Mantovani A., Bottazzi B., Denoel P., Leroux-Roels G., Kester K., Jónsdóttir I., van den Berg R.A., Kaufmann S., Del Giudice G. Characterization of potential biomarkers of reactogenicity of licensed antiviral vaccines: randomized controlled clinical trials conducted by the BIOVACSAFE consortium. Sci. Rep. 2019;9(1):20362. doi: 10.1038/s41598-019-56994-8. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Weldon C., Dacanay J.G., Gokhale V., Boddupally P.V.L., Behm-Ansmant I., Burley G.A., Branlant C., Hurley L.M., Dominguez C., Eperon I.C. Specific G-quadruplex ligands modulate the alternative splicing of Bcl-X. Nucleic Acids Res. 2018;46(2):886–896. doi: 10.1093/nar/gkx1122. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Williams G.D., Gokhale N.S., Snider D.L., Horner S.M. The mRNA cap 2′-O-methyltransferase CMTR1 regulates the expression of certain interferon-stimulated genes. mSphere. 2020;5(3) doi: 10.1128/mSphere.00202-20. e00202-e00220. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wisnewski A.V., Campillo Luna J., Redlich C.A. Human IgG and IgA responses to COVID-19 mRNA vaccines. PLoS One. 2021;16(6) doi: 10.1371/journal.pone.0249499. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wrapp D., Wang N., Corbett K.S., Goldsmith J.A., Hsieh C.L., Abiona O., Graham B.S., McLellan J.S. Cryo-EM structure of the 2019-nCoV spike in the prefusion conformation. Science. 2020;367(6483):1260–1263. doi: 10.1126/science.abb2507. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Xia X. Detailed dissection and critical evaluation of the Pfizer/BioNTech and Moderna mRNA vaccines. Vaccines. 2021;9:734. doi: 10.3390/vaccines9070734. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Yahi N., Chahinian H., Fantini J. Infection-enhancing anti-SARS-CoV-2 antibodies recognize both the original Wuhan/D614G strain and Delta variants. A potential risk for mass vaccination? J. Infect. 2021;83(5):607–635. doi: 10.1016/j.jinf.2021.08.010. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Yang C., Hu Y., Zhou B., Bao Y., Li Z., Gong C., Yang H., Wang S., Xiao Y. The role of m6A modification in physiology and disease. Cell Death Dis. 2020;11:960. doi: 10.1038/s41419-020-03143-z. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Yoshikawa F.S., Teixeira F.M., Sato M.N., Oliveira L.M. Delivery of microRNAs by extracellular vesicles in viral infections: could the news be packaged? Cells. 2019;8(6):611. doi: 10.3390/cells8060611. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Yu X., Odenthal M., Fries J.W.U. Exosomes as miRNA carriers: formation–function–future. Int. J. Mol. Sci. 2016;17:2028. doi: 10.3390/ijms17122028. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zakaria Z., Sapiai N.A., Izaini Ghani A.R. Cerebral venous sinus thrombosis 2 weeks after the first dose of mRNA SARS‐CoV‐2 vaccine. Acta Neurochir. 2021;163(8):2359–2362. doi: 10.1007/s00701-021-04860-w. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zhang J., Powell S.N. The role of the BRCA1 tumor suppressor in DNA double-strand break repair. Mol. Cancer Res. 2005;3(10):531–539. doi: 10.1158/1541-7786.MCR-05-0192. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zhang W., Luo J., Yang F., Wang Y., Yin Y., Strom A., Gustafsson J.Å., Guan X. BRCA1 inhibits AR-mediated proliferation of breast cancer cells through the activation of SIRT1. Sci. Rep. 2016;6:22034. doi: 10.1038/srep22034. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zhang R., Xiao K., Gu Y., Liu H., Sun X. Whole genome identification of potential G-quadruplexes and analysis of the G-quadruplex binding domain for SARS-CoV-2. Front. Genet. 2020;11 doi: 10.3389/fgene.2020.587829. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zhao Y., Chen W., Zhu W., Meng H., Chen J., Zhang J. Overexpression of interferon regulatory factor 7 (IRF7) reduces bone metastasis of prostate cancer cells in mice. Oncol. Res. 2017;25(4):511. doi: 10.3727/096504016X14756226781802. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zhou M., Guo J., Cha J., Chae M., Chen S., Barral J.M., Sachs M.S., Liu Y. Non-optimal codon usage affects expression, structure and function of clock protein FRQ. Nature. 2013;495(7439):111–115. doi: 10.1038/nature11833. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zin Tun G.S., Gleeson D., Al-Joudeh A., Dube A. Immune-mediated hepatitis with the Moderna vaccine, no longer a coincidence but confirmed. J. Hepatol. 2021 doi: 10.1016/j.jhep.2021.09.031. Oct 5. [Epub ahead of print] [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zitvogel L., Galluzzi L., Kepp O., Smyth M.J., Kroemer G. Type I interferons in anticancer immunity. Nat. Rev. Immunol. 2015;15(7):405–414. doi: 10.1038/nri3845. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Zoll J., Erkens Hulshof S., Lanke K., Verduyn Lunel F., Melchers W.J., Schoondermark-van de Ven E., Roivainen M., Galama J.M., van Kuppeveld F.J. Saffold virus, a human Theiler’s-like cardiovirus, is ubiquitous and causes infection early in life. PLoS Pathog. 2009;5(5) doi: 10.1371/journal.ppat.1000416. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Les injections ne protègent pas des formes graves de la covid , les injectés récents ne sont pas plus protégés que les autres et les classes d’âges les plus contaminées sont également les plus vaccxx . L’analyse est également vérifiée pour les pays . Vous n’en doutez pas si vous êtes habitués de ce blog, mais le plus amusant , c ‘est que ces preuves sont avancées par deux ardents vaccinolâtres, Catherine Hill et Nicolas Berrod…
L’excellent Marco Nius a trouvé dans les statistiques officielles d’autres informations bien utiles
1 Nicolas BERROD ( le PARISIEN ) nous démontre que plus les classes d’âges sont vaxcc plus elles sont contaminées mais… ne parvient pas à conclure
Sacré Nicolas, , regardez le document ci dessous, il met en évidence le pourcentage de cas positifs à la covid pour 100 tests. Que remarquez vous?
35% des tests des 40 à 49 ans et des 50 à 59 ans sont positifs contre 13% pour les 0 à 9ans !
Nicolas ne fait pas de comparaison avec les taux de vaccination, également ci dessous, attention les non vaccxx sont sous estimés comme nous le verrons plus loin , zut alors les deux catégories d’âges les plus contaminées sont auxxi les plus vaccxxx
Et les petits; moins de 3% de vaccinés et trois fois moins de tests positifs que les précédents…
De quoi interroger , mais Nicolas a trouvé , explication, les jeunes font moins de tests… Soit Nicolas , peut être parce qu’ils sont moins malades et là nous parlons bien du pourcentage de tests positifs , la quantité de tests n’intervient pas. Il est vrai que si ont compare la contamination par classe d’âges, alors c’est effrayant:150 malades pour 100 000 enfants et de 600 à 900 pour 100 000 dans les catégories vaccxx à 90%
2 CATHERINE HILL avoue que 13% des plus de 80ans ne sont pas injectés… et nous savons qu’ils représentent 13% des hospitalisés en soins critiques
Catherine Hill n’a pas menti , les plus de 80 ans sont bien 13% a ne pas avoir été injectés, mais c ‘est deux fois plus que ne l’affirme la propagande officielle et ça change tout
Depuis deux ans il n’existe qu’un seul type de preuves de l’efficacité des injections contre les formes graves de la covid: les statistiques de la Drees . Vous vous souvenez, il y a un an et plus les médias nous expliquaient que l’immense majorité des soins critiques n’étaient pas vaccinés . La supercherie reposait sur deux piliers:
1 Les injectés tombés malades dans les 15 premiers jours suivant la vaccination étaient systématiquement classés non vaccinés . Nous savons depuis que l’immense majorité des covid arrivent dans ces deux semaines
2 Si le nombre d’injectés est connu, celui des non vaccinés était considérablement sous estimé. Les statistiques de malades pour 100 000 personnes s’en trouvaient faussées
Rappelons que ce sont les médecins majoritairement hyper Provax qui attribuent la cause d’hospitalisation ou de décès. Les non vaccinés étant très peu nombreux une légère sur-déclaration en Covid chez eux aura un gros effet sur l’efficacité calculée.
Depuis la Drees a reconnu que son estimation des non vaccinés était totalement fausse. D’autres statistiques fiables existent comme celles de la Sécurité sociale et alors tout s’inverse. Le pdf ci dessous renvoie au rapport du début octobre…La différence va du simple au double……………. Ainsi pour les plus de 20 ans , il n’y aurait pas 7% de non vaccxx mais 14%
Toute la propagande s’effondre et la Drees cesse alors de publier ses comparatifs de pourcentages vaccinés et non vaccinés en soins critiques……….
Marco Nius nous fournit le lien qui vous permet de vérifier par vous mêmes qui est malade et de comparer avec les vrais pourcentages ( graphiques ci dessous)
« On a très mal vacciné les gens de 80 ans et plus. 13 % de cette catégorie n’ont pas du tout été vaccinés », déplore l’épidémiologiste Catherine Hill. « La Sécurité sociale sait qui n’a pas du tout été vacciné. Il faut aller les vacciner chez eux, ils ne sont pas mobiles. » #CVR https://pic.twitter.com/LffL2DICCd
Desole mamy Catherine les 13% de non vaccinés parmi les plus de 80 ans représentent…13% des soins critiques sources officielles de la drees
MERCI POUR CETTE DEMONSTRATION LES INJECTIONS NE PROTEGENT PAS DES FORMES GRAVES
et c’est pire pour les plus jeunes
3 Les statistiques sont toujours plus complotistes : les injectés les plus récents sont plus malades que les autres
Marco Nius tire de la drees les stats en tenant compte de l’ancienneté de la piqure, c’est désespérant ,les injectés récents de moins de six mois représentent 15.5% es plus de 80 ans et 22.5% des décès
Les publications scientifiques se suivent et se ressemblent, les accidents cardiaques post vaccinaux sont 800 fois plus nombreux que l’on ne croyait
Tous n’en sont pas conscients mais un ado vacciné sur trois a connu des manifestations cardiovasculaires après les injections , un sur cent doit faire l’objet de soins urgents , pour les autres on ignore les conséquences futures
(https://mdpi.com/2414-6366/7/8/196…) Etude prospective sur adolescents ayant reçu le vaccin ARNm Pfizer : 29% ont des manifestations cardiovasculaires allant de la tachycardie à la myo/péricardite
Cette étude se concentre sur les manifestations cardiovasculaires, en particulier les événements de myocardite et de péricardite, après l’injection du vaccin BNT162b2 ARNm COVID-19 chez les adolescents thaïlandais.301 participants pour analyse.
Les signes et symptômes cardiovasculaires les plus courants étaient la tachycardie (7,64 %), l’essoufflement (6,64 %), les palpitations (4,32 %), les douleurs thoraciques (4,32 %) et l’hypertension (3,99 %). Un participant peut avoir plus d’un signe et/ou symptôme. Sept participants (2,33 %) présentaient au moins un biomarqueur cardiaque élevé ou des évaluations de laboratoire positives. Des manifestations cardiovasculaires ont été retrouvées chez 29,24 % des patients, allant de la tachycardie ou des palpitations à la myopéricardite.
Par conséquent, les adolescents recevant des vaccins à ARNm doivent être surveillés pour les effets secondaires cardiovasculaires.
Une étude de l’Université de Bâle a récemment trouvé une augmentation de la troponine chez près de 3 employés sur 100 (!) après des rappels comme signe de lésions du muscle cardiaque – et donc autour de 800x plus fréquemment que dans l’observation purement passive. études.
Passons maintenant à l’étude de Heidelberg, dans laquelle 25 personnes décédées de manière inattendue peu de temps après la vaccination (dans les 20 jours) ont subi une autopsie. Une (péri-) myocardite sans autre cause plausible de décès a été retrouvée chez 4 de ces patients.
Les personnes décédées n’avaient pas consulté de médecin auparavant (et n’auraient pas été signalées au PEI/autres registres, puisqu’elles n’avaient AUCUN symptôme de myocardite avant leur décès). Aucun des vert. avait auparavant COVID. Et aucun n’avait de préexistence cardiopathie
Les auteurs déclarent qu’au cours des « 20 dernières années à l’hôpital universitaire de Heidelberg, ils n’ont vu aucune inflammation (!) comparable dans le muscle cardiaque ».
Skowronski, DM ; De Serres, G. Innocuité et efficacité du vaccin BNT162b2 ARNm Covid-19. N. Engl. J. Med. 2021 , 384 , 1576–1577. [ Google Scholar ] [ PubMed ]
Walsh, EE ; Frenck, RW, Jr.; Falsey, AR ; Kitchin, N.; Absalon, J.; Gurtman, A.; Lockhart, S.; Neuzil, K.; Mulligan, MJ; Bailey, R.; et coll. Innocuité et immunogénicité de deux candidats vaccins COVID-19 à base d’ARN. N. Engl. J. Med. 2020 , 383 , 2439–2450. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Olivier, SE ; Gargano, JW ; Marin, M.; Wallace, M.; Curran, KG; Chamberland, M.; McClung, N.; Campos-Outcalt, D.; Morgan, RL; Mbaeyi, S.; et coll. Recommandation provisoire du Comité consultatif sur les pratiques d’immunisation pour l’utilisation du vaccin Pfizer-BioNTech COVID-19–États-Unis, décembre 2020. Morb. Mortel. Wkly. Rép. 2020 , 69 , 1922–1924. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Faix, DJ ; Gordon, sous-ministre ; Perry, LN; Raymond-Loher, I.; Tati, N.; Lin, G.; DiPietro, G.; Selmani, A.; Decker, MD Étude prospective de surveillance de l’innocuité du vaccin antivariolique ACAM2000 lors du déploiement de personnel militaire. Vaccin 2020 , 38 , 7323–7330. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Muthukumar, A.; Narasimhan, M.; Li, Q.-Z. ; Mahimainathan, L.; Hitto, je. ; Fuda, F.; Batra, K.; Jiang, X.; Zhu, C.; Schoggins, J.; et coll. Évaluation approfondie d’un cas de myocardite présumée après la deuxième dose de vaccin à ARNm COVID-19. Diffusion 2021 , 144 , 487–498. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Fairweather, D.; Cooper, LT ; Blauwet, LA Différences de sexe et de genre dans la myocardite et la cardiomyopathie dilatée. Courant. Probl. Cardol. 2013 , 38 , 7–46. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Witberg, G.; Barda, N.; Hoss, S.; Richter, I.; Wiessman, M.; Aviv, Y.; Grinberg, T.; Auster, O.; Dagan, N.; Balicer, RD; et coll. Myocardite après la vaccination contre le Covid-19 dans une grande organisation de soins de santé. N. Engl. J. Med. 2021 , 385 , 2132–2139. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Mevorach, D.; Anis.; Cèdre, N. ; Bromberg, M.; Haas, EJ; Nadir, E.; Olsha-Castell, S.; Arad, D.; Hasin, T.; Levi, N.; et coll. Myocardite après vaccin ARNm BNT162b2 contre le Covid-19 en Israël. N. Engl. J. Med. 2021 , 385 , 2140–2149. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Gargano, JW ; Wallace, M.; Hadler, SC; Langley, G.; Su, JR ; Oster, MOI ; Broder, KR; Gee, J.; Weintraub, E.; Shimabukuro, T.; et coll. Utilisation du vaccin ARNm COVID-19 après des rapports de myocardite parmi les receveurs de vaccins : mise à jour du Comité consultatif sur les pratiques d’immunisation – États-Unis, juin 2021. MMWR. Morbe. Mortel. Wkly. Rép. 2021 , 70 , 977–982. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Caforio, AL; Pankuweit, S.; Arbustini, E.; Basso, C.; Gimeno-Blanes, J.; Félix, SB ; Fu, M.; Heliö, T.; Heymans, S.; Jahns, R.; et coll. Groupe de travail de la Société européenne de cardiologie sur les maladies du myocarde et du péricarde. État actuel des connaissances sur l’étiologie, le diagnostic, la prise en charge et le traitement de la myocardite : prise de position du groupe de travail de la Société européenne de cardiologie sur les maladies myocardiques et péricardiques. EUR. Heart J. 2013 , 34 , 2636–2648. [ Google Scholar ] [ PubMed ]
Su, JR ; McNeil, MM; Gallois, KJ; Marquez, PL; Ng, C.; Yan, M.; Cano, Myopéricardite à MV après vaccination, Système de notification des événements indésirables liés aux vaccins (VAERS), 1990-2018. Vaccin 2021 , 39 , 839–845. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Shimabukuro, TT ; Nguyen, M.; Martin, D.; DeStefano, F. Surveillance de la sécurité dans le système de notification des événements indésirables des vaccins (VAERS). Vaccin 2015 , 33 , 4398–4405. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Guo, T. ; Ventilateur, Y. ; Chen, M.; Wu, X.; Zhang, L.; Lui, T. ; Wang, H.; Wan, J.; Wang, X.; Lu, Z. Implications cardiovasculaires des issues fatales des patients atteints de la maladie à coronavirus 2019 (COVID-19). JAMA Cardiol. 2019 , 5 , 811–818. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Centres de contrôle et de prévention des maladies (CDC). Comité consultatif sur la pratique de l’immunisation (ACIP). Vaccins contre la maladie à coronavirus 2019 (COVID-19). Disponible en ligne : https://www.cdc.gov/vaccines/acip/meetings/slides-2021-10.html (consulté le 23 janvier 2022).
Kuntz, J.; Crane, B. ; Weinmann, S.; Naleway, AL La myocardite et la péricardite sont rares après des vaccinations virales vivantes chez l’adulte. Vaccin 2018 , 36 , 1524–1527. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
García, JB; Ortega, PP; Fernandez, JAB ; Léon, AC ; Burgos, LR; Dorta, EC Myocardite aiguë après administration du vaccin BNT162b2 contre le COVID-19. Rév. Esp. Cardol. 2021 , 74 , 812–814. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Bozkurt, B.; Kamat, I. ; Hotez, PJ Myocardite avec des vaccins à ARNm COVID-19. Diffusion 2021 , 144 , 471–484. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Kaur, RJ; Dutta, S.; Charan, J.; Bhardwaj, P.; Tandon, A.; Yadav, D.; Islam, S.; Haque, M. Événements indésirables cardiovasculaires signalés par les vaccins COVID-19 : une étude basée sur la base de données de l’OMS. Int. J. Gen. Med. 2021 , 14 , 3909–3927. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Pardi, N.; Hogan, MJ; Porteur, FW ; Weissman, D. vaccins à ARNm – une nouvelle ère en vaccinologie. Nat. Rev. Drug Discov. 2018 , 17 , 261–279. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Administration américaine des aliments et médicaments. Mise à jour sur le coronavirus (COVID-19) : la FDA autorise le vaccin Pfizer-BioNTech COVID-19 pour une utilisation d’urgence chez les adolescents dans le cadre d’une action d’une autre importance en cas de pandémie ; Food and Drug Administration des États-Unis : Silver Spring, MD, États-Unis, 2021. [ Google Scholar ]
Montgomery, J.; Ryan, M.; Engler, R.; Hoffman, D.; McClenathan, B.; Collins, L.; Loran, D.; Hrncir, D.; Hareng, K. ; Platzer, M.; et coll. Myocardite après immunisation avec des vaccins à ARNm COVID-19 chez les membres de l’armée américaine. JAMA Cardiol. 2021 , 6 , 1202–1206. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Mouch, SA ; Roguin, A.; Bonjour, E. ; Ishai, A.; Shoshan, U. ; Mahamid, L.; Zoabi, M.; Aisman, M.; Goldschmid, N.; Yanay, NB Myocardite suite à la vaccination par ARNm de la COVID-19. Vaccin. 2021 , 39 , 3790–3793. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Puissance, JR ; Keyt, LK; Adler, ED Myocardite suivant la vaccination COVID-19 : Incidence, mécanismes, et considérations cliniques. Expert Rev. Cardiovasc. Là. 2022 , 20 , 241–251. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Hajjo, R.; Sabba, DA ; Bardaweel, Sask.; Tropsha, A. Faire la lumière sur la myocardite et la péricardite post-vaccinales chez les receveurs de vaccins COVID-19 et non COVID-19. Vaccins 2021 , 9 , 1186. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Wolff, JA; Malone, RW ; Williams, P.; Chong, W.; Acsadi, G.; Jani, A.; Felgner, PL Transfert direct de gène dans le muscle de la souris in vivo. Sciences 1990 , 247 Pt 1 , 1465–1468. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Ahin, U.; Kariko, K.; Türeci, Ö. Thérapeutique à base d’ARNm – développement d’une nouvelle classe de médicaments. Nat. Rev. Drug Discov. 2014 , 13 , 759–780. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Vora, SM; Lieberman, J.; Wu, H. Activation de l’inflammasome au cœur du COVID-19 sévère. Nat. Rév. Immunol. 2021 , 21 , 694–703. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Chilamahuri, R.; Agarwal, S. COVID-19 : Caractéristiques et thérapeutique. Cellules 2021 , 10 , 206. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Aikawa, T.; Takagi, H.; Ishikawa, K.; Kuno, T. Lésion myocardique caractérisée par une troponine cardiaque élevée et une mortalité hospitalière de COVID-19 : un aperçu d’une méta-analyse. J. Med. Virole. 2021 , 93 , 51–55. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Maiese, A.; Frati, P.; Del Duca, F.; Santoro, P.; Manetti, AC ; La Russa, R.; Di Paolo, M.; Turillazzi, E.; Fineschi, V. Pathologie myocardique dans les lésions cardiaques associées au COVID-19 : une revue systématique. Diagnostic 2021 , 11 , 1647. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Tano, E.; San Martin, S.; Girgis, S.; Martinez-Fernandez, Y.; Sanchez Vegas, C. Périmyocardite chez les adolescents après le vaccin Pfizer-BioNTech COVID-19. J. Pediatr. Infecter. Dis. Soc. 2021 , 10 , 962–966. [ Google Scholar ] [ CrossRef ]
Marshall, M.; Ferguson, ID ; Lewis, P.; Jaggi, P.; Gagliardo, C.; Collins, JS; Shaughnessy, R.; Caron, R.; Fuss, C.; Corbin, KJE; et coll. Myocardite aiguë symptomatique chez 7 adolescents après vaccination Pfizer-BioNTech COVID-19. Pédiatrie 2021 , 148 , e2021052478. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Ashor, AW; Lara, J.; Mathers, JC; Siervo, M. Effet de la vitamine C sur la fonction endothéliale dans la santé et la maladie : une revue systématique et une méta-analyse d’essais contrôlés randomisés. Athérosclérose 2014 , 235 , 9–20. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Beretta, M. ; Quagliariello, V.; Maurea, N.; Di Francia, R.; Sharifi, S.; Facchini, G.; Rinaldi, L.; Piezzo, M.; Manuela, C.; Nunnari, G.; et coll. Effets multiples de l’acide ascorbique contre les maladies chroniques : preuves mises à jour des études précliniques et cliniques. Antioxydants 2020 , 9 , 1182. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
Hsiao, JF; Koshino, Y.; Bonnichsen, CR; Yu, Y.; Miller FAJr Pellikka, PA; Cooper, LT, Jr. Villarraga HR. Échocardiographie de suivi du chatoiement dans la myocardite aiguë. Int. J. Cardiovasc. Imagerie 2013 , 29 , 275–284. [ Google Scholar ] [ CrossRef ] [ PubMed ]
1 L’industrie disparaitra t elle totalement en France????
Le gazoduc « Force de Sibérie » vient d’être connecté à la mégapole de Shanghai ! 15 cts le M3 contre 2,5 $ le M3 de gaz de schiste US en Europe… Et les pauvres macroniais de croire que les usines vont rester dans l’UE…
Emmanuel Macron a sacrifié en 2019 le nucléaire du futur – la 4ème génération – car il manquait 1 milliard d'€ pour boucler le projet alors qu'en même temps il a injecté plus de 500 milliards d'€ sur le covid19. Macron un vrai visionnaire ! pic.twitter.com/DuxusqD1f5
Il y a deux ans fermer Fessenheim était une fierté et un engagement de Macron.#Borne en 2020: "C’est Historique parce que comme vous le soulignez, ça fait des années qu'on dit aux Français qu'il faut baisser la part du nucléaire dans notre électricité, ça fait des années ⏬ pic.twitter.com/PgPplVwHWL
Les analystes ont averti l’industrie européenne que la crise à laquelle elle est confrontée cet hiver ne se terminera pas avec la fin du froid. Elle a encore au moins deux années difficiles devant elle. De nombreuses entreprises de l’UE deviendront non rentables en raison de ressources énergétiques coûteuses. Elles seront obligées de fermer ou de déplacer la production vers d’autres pays. Où l’industrie européenne se déplacera-t-elle et en combien d’années l’UE sera désindustrialisée ?
Les industries de l’acier, de l’automobile et de la chimie subissent une pression énorme en raison de la hausse des coûts de production. Ceux-ci n’ont faiblement augmenté qu’en France et en Espagne, car le mix énergétique de ces pays comporte une forte part d’énergie nucléaire et d’énergies renouvelables. Et encore, faut-il relativiser ce constat. D’autres pays de l’UE, fortement dépendants du pétrole et du gaz russes, tels que la Pologne et l’Allemagne, ont subi de plus grandes contraintes en raison des pénuries de gaz.
La consommation de gaz a baissé de 30% dans l’industrie Déficit de compétitivité face aux USA : «l’énergie se vend cinq à six fois moins cher»
Réunis pour une conférence sur l’énergie, le Medef et plusieurs industriels somment l’UE de réformer au plus vite le marché de l’énergie. Pourtant le Medef a fait voter Macron
Ces lourdes factures énergétiques pèsent sur la production industrielle, qui décélère. A la tribune, le Pdg d’Engie Jean-Pierre Clamadieu a confirmé une baisse « très importante de la consommation de gaz, de l’ordre de 30% » dans de grands groupes industriels. Ce qui signifie « de la substitution (recours à des énergies moins coûteuses) » mais, surtout, une « baisse de la production ».
A titre d’exemple, la production d’engrais, qui repose essentiellement sur du gaz, s’effondre de 60% à 70% d’après Jean-Pierre Clamadieu
Dans ce contexte, le plan anti-inflation IRA (Inflation Reduction Act) de Joe Biden arrive au pire moment pour les Européens qui voudraient réindustrialiser leurs économies. Pour relancer le « made in America » dans des secteurs clés (automobile électrique, batteries, énergies renouvelables), la Maison Blanche fait miroiter près de 400 milliards d’euros de subventions – disponibles à partir de janvier 2023 – aux industriels qui installent leurs usines sur le sol américain, également très attractif par ses coûts de l’énergie.
Les Etats-Unis braconnent l’industrie européenne
En outre, les dirigeants français et allemands ont récemment exprimé leur mécontentement en constatant que les États-Unis « braconnent » littéralement l’industrie européenne ; non seulement par le biais de ressources énergétiques moins chères, mais aussi en offrant aux entreprises cibles des avantages supplémentaires pour qu’elles transfèrent leur production sur son territoire. Déjà, une soixantaine d’entreprises allemandes ont l’intention de s’installer dans un seul Etat, celui de l’Oklahoma !
L’industrie européenne s’inquiète à juste titre du fait que, si cette année il a été possible de remplir les installations de stockage souterrain de gaz en Europe (UGSF) jusqu’à 90 %, il ne sera pas possible faire le plein à un niveau aussi élevé pour l’hiver prochain. Le fait est que l’Europe a réussi à importer des volumes record de GNL cette année parce que la demande de la Chine s’est avérée atone. Et la Chine a même exporté une partie du GNL sous contrat vers l’Europe. Cependant, au cours de la nouvelle année, la Chine pourrait mettre fin à la politique zéro covid et revenir à une consommation élevée de GNL. Les circonstances favorables de 2022 pourraient ainsi ne pas se reproduire en 2023.
Nouvelle usine de Safran en France en suspens
"Aujourd'hui je ne suis pas en état, compte tenu des prix de l'énergie en France et Europe, de prendre cette décision qui ne serait économiquement pas raisonnable"
2UNE FRANCE endettée qui a indexée sa dette sur… l’inflation
La nouvelle est quasiment passée inaperçue, méthode Coué oblige, mais elle est pourtant incroyable et dramatique : le FMI vient de lancer un avertissement non pas à l’Italie ou à la Grèce, mais à la France pour le dérapage incontrôlé de ses comptes publics.
Il faut dire qu’après le “quoi qu’il en coûte” de 2020-2021, puis le bouclier tarifaire de 2022, la dette publique française a explosé de près de 550 milliards d’euros. Et ce, alors que la France est en train de replonger en récession et doit faire face à une inflation de plus en plus forte.
Mais bien loin de se calmer et de stopper sa fuite en avant, la puissance publique française a décidé de continuer sa gabegie de dépenses et de dette… Les prévisions du FMI sont très claires : en matière de maîtrise de ses dépenses publiques et de déficit public, la France sera le cancre de l’Europe et ce jusqu’en 2027. En effet, selon lui, le déficit public atteindra au moins 5,4% en 2023 et se stabilisera ensuite autour des 5% au moins jusqu’en 2027. A titre de comparaison, d’ici quatre ans, l’Allemagne réduira son déficit public à 0,5% du PIB, l’Italie à 3% et l’ensemble de la Zone Euro à 2,5%. Face à ces dérapages incontrôlés et très coûteux pour les contribuables français (qui, comme d’habitude, seront les « dindons de la farce »), quatre grandes questions se posent.
Les craintes et l’avertissement du FMI sont-ils justifiés ? Malheureusement oui ! Certes, les prévisions du FMI sont souvent très loin de la réalité, notamment en termes de croissance. Elles doivent donc évidemment être prises avec des pincettes. Pour autant, il est clair qu’au regard de la politique budgétaire française passée, actuelle et à venir, le déficit public français va inévitablement se creuser. Selon nos prévisions, il pourrait même atteindre les 6% en 2023.
Comment en est-on arrivé là ? La réponse est malheureusement simple : le dernier excédent des comptes publics français remonte à… 1974. Depuis, que des déficits ! C’est d’ailleurs sur ce point que la théorie keynésienne de relance a été complètement bafouée en France. En effet, la politique de relance budgétaire est justifiée lorsque la récession menace ou s’installe. Dès lors, elle permet de redresser la barre. En revanche, et c’est ce qu’ont oublié les dirigeants du pays, mais aussi la très grande majorité des économistes français, une fois que la croissance est de retour et que les moteurs privés ont pris le relais, l’Etat doit réduire la voilure, Le sommet de l’absurde a été atteint en 1998-2000, lorsque malgré une croissance économique de plus de 3,5% par an, le gouvernement Jospin a décidé de dilapider une “cagnotte” conjoncturelle et de la transformer en dépenses structurelles.
Depuis, rien ou presque n’a changé et la fuite en avant n’a cessé de continuer. Elle a simplement changé de nom, devenant le fameux “quoi qu’il en coûte”. Seulement voilà, si de 2020 à 2022, ce dernier a été financé par la “planche à billets” de la BCE, l’arrêt de cette dangereuse stratégie monétaire va désormais imposer à la France de payer la facture, notamment au travers de l’augmentation des taux d’intérêt des obligations d’Etat. Et même si ces derniers ont dernièrement reculé, la facture sera très salée. Au moins 110 milliards d’euros de surcharge d’intérêts de la dette pour les dix années à venir.
Quels seront les résultats de l’économie française en matière de croissance, d’inflation et de déficits en 2023 ? Le problème est que si, à la rigueur, les dérapages budgétaires français avaient permis de susciter une croissance forte et durable, nous aurions pu crier “au diable l’avarice !” Mais, malheureusement, tel n’a pas été le cas. Loin s’en faut. Et pour cause : après avoir augmenté de seulement 0,7% par an en moyenne entre 2007 et 2021, le PIB français devrait reculer fin 2022 et début 2023. Dans ce cadre, et même si un rebond technique paraît encore possible par la suite, la variation annuelle du PIB français sera d’au mieux 0,2% en 2023.
Marc Touati, économiste, président du cabinet ACDEFI
Son nouveau livre, RESET II – Bienvenue dans le monde d’après, sorti le 1er septembre 2022, est en tête des ventes des essais économiques sur Amazon.
Quand j'ai vu ce reportage ce soir d'Eddy 38 ans qui dort dans sa voiture et qui se nourrit à peine, j'ai pensé aux milliards donnés à l'Ukraine, à la fondat& de B Gates, à l'Afrique du Sud par Macron. Macron en a rien à foutre de la misère française qui ne cesse d'exploser 😡 pic.twitter.com/LK5blA6EdY
— 🇫🇷 fred le gaulois 🇫🇷 Uniondesdroites 🐱 (@FredGaulois) November 27, 2022
Faillites : le tribunal de commerce de Lyon tire la sonnette d’alarme
Alors que le nombre de ses procédures a augmenté de 42 % par rapport à 2021, la deuxième juridiction de France redoute que la flambée de l’énergie précipite à terme des entreprises vers la faillite.
